Leica Microscope And Magnifier Dm5000B Users Manual DM4000 5000 Cover E/d

DM4000M to the manual 8338026a-ab2a-494d-8ca9-9b65d7a84e61

2015-02-02

: Leica Leica-Leica-Microscope-And-Magnifier-Dm5000B-Users-Manual-435637 leica-leica-microscope-and-magnifier-dm5000b-users-manual-435637 leica pdf

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Leica DM4000 B

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

Leica DM5000 B

Operating Manual

Bedienungsanleitung

Published September 2007 by:

Herausgegeben September 2007 von:

Leica Microsystems CMS GmbH

Ernst-Leitz-Straße

D-35578 Wetzlar (Germany)

Responsible for contents:

Verantwortlich für den Inhalt:

Dr. Jasna Roeth, Stefan Motyka

(Marketing CM, Compound Microscopy, Product Management)

(Marketing CM, Compound Microscopy, Produktmanagement)

Holger Grasse

(Safety Officer according to MPG §30)

(Sicherheitsbeauftragter nach MPG §30)

In case of questions, please contact the hotline:

Bei Fragen wenden Sie sich bitte an die Hotline: Phone +49(0)64 41-29 22 86

Fax +49(0)64 41-29 22 55

E-Mail: MQM-Hotline@leica-microsystems.com

Leica DM4000 B

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

Leica DM5000 B

Operating Manual

Copyrights

All rights to this documentation are held by

Leica Microsystems CMS GmbH. Reproduction

of text or illustrations (in whole or in part) by

print, photocopy, microfilm or other method

(including electronic systems) is not allowed

without express written permission from Leica

Microsystems CMS GmbH.

The term "Windows" may appear in the following

text without further identification. It is, however,

a registered trademark of Microsoft Corpora-

tion. The names of companies and products

used herein may be trademarks of their respec-

tive owners.

The instructions contained in the following doc-

umentation reflect state-of-the-art technology

and knowledge standards. We have compiled

the texts and illustrations as accurately as pos-

sible. Nevertheless, no liability of any kind may

be assumed for the accuracy of this manual’s

contents. Still, we are always grateful for com-

ments and suggestions regarding potential mis-

takes within this documentation.

The information in this manual is subject to mod-

ification at any time and without notification.

Contents

7. Startup ......................................................... 35

7.1 Functional principle .................................. 35

7.2 Switching on the unit ................................ 38

7.3 The display

(DM4000 B/4500 B/4000 M/4500 P)......... 39

7.4 The function keys ...................................... 40

7.5 Köhler illumination .................................... 41

7.5.1 Transmitted light ............................. 41

7.5.2 Incident light.................................... 42

7.6. Checking the phase contrast rings ........ 44

7.7 Setting the motorized polarizer

(DM4500 P/DM5000 B) .............................. 45

7.8 Adjusting the light sources...................... 45

8. Operation .................................................... 51

8.1 Switching on the unit ................................ 51

8.2 Stages and object displacement............ 51

8.3 Focusing ...................................................... 53

8.4 Tubes ....................................................... 53

8.5 Eyepieces .................................................... 55

8.6 Objectives ................................................... 55

8.7 Magnification changer ............................. 58

8.8 HC P 1x/1.6x tube optics........................... 58

8.9 Light sources .............................................. 59

8.10 Aperture diaphragm and

field diaphragm .......................................... 59

Contents

1. Important notes about this manual ....... 7

2. Intended purpose of the microscope .... 8

3. Safety notes................................................ 9

3.1 General safety notes................................. 9

3.2 Electrical safety ......................................... 10

3.3 Disposal ....................................................... 11

4. Overview of the instrument .................... 12

5. Unpacking the microscope..................... 17

6. Assembling the microscope ................... 19

6.1 Specimen stage ......................................... 19

6.2 Condenser ................................................... 21

6.3 Tube and eyepieces .................................. 22

6.4 Objectives ................................................... 23

6.5 Light sources for the transmitted

light axis ...................................................... 23

6.6 Light sources for the incident

light axis ...................................................... 25

6.7 Equipping the incident light

turret disk .................................................... 30

6.8 Polarizer and analyzer .............................. 31

6.9 DIC prisms ................................................... 32

6.10 Optional accessories ................................ 33

6.11 Connection to the power supply ............ 34

6.12 Connecting to the CTR5000

electronics box .......................................... 34

Contents

9. Contrast methods for

Leica DM4000 B/DM4500 B/

DM4500 P/DM5000 B ................................ 60

9.1 Transmitted light ........................................ 60

9.1.1 Bright field ......................................... 60

9.1.2 Phase contrast.................................. 60

9.1.3 Dark field............................................ 61

9.1.4 Polarization........................................ 61

9.1.4.1 Manual method ............................. 61

9.1.4.2 DM4500 P - examinations

in polarized transmitted light...... 62

9.1.4.3 Motorized method ........................ 68

9.1.4.4 Combined methods....................... 68

9.1.5 Differential interference

contrast ............................................ 68

9.1.5.1 DM4500 B/DM4500 P .................... 68

9.1.5.2 DM5000 B........................................ 69

9.2 Fluorescence.............................................. 70

10. Contrast methods for

Leica DM4000 M ........................................ 71

10.1 Incident light .............................................. 71

10.1.1 Bright field ....................................... 71

10.1.2 Dark field.......................................... 71

10.1.3 Polarization...................................... 72

10.1.4 Interference contrast .................... 73

10.2 Transmitted light ........................................ 73

10.2.1 Bright field ....................................... 73

10.2.2 Polarization...................................... 73

11. Troubleshooting......................................... 74

12. Care of the microscope ........................... 77

12.1 Dust cover................................................... 77

12.2 Cleaning....................................................... 77

12.3 Handling acids and bases ....................... 78

13. Essential wear and spare parts ............. 79

14. Abbreviations and pictograms ............... 80

15. Index ............................................................ 81

16. EU Declaration of Conformity................. 82

1. Important notes about this manual

(1.2)

→ p.20

Numbers in parentheses, such as "(1.2)", corre-

spond to illustrations (in the example, Figure 1,

Item 2).

Numbers with pointer arrows (for example →

p.20), point to a certain page of this manual.

Caution!

Special safety instructions within this manu-

al are indicated with the triangle symbol

shown here, and have a gray background.

Caution! The microscope and accessories can

be damaged when operated incorrectly.

Explanatory note.

Instructions on disposing of the microscope,

accessory components and consumables.

Item not contained in all configurations.

Text symbols, pictograms and their meanings:

Caution!

This operating manual is an essential com-

ponent of the microscope, and must be read

carefully before the microscope is assem-

bled and put into operation.

1. Important notes about this manual

This operating manual contains important in-

structions and information for the operational

safety and maintenance of the microscope and

accessories. It must therefore be kept safely for

future reference.

2. Intended purpose of the microscope

The DM4000 – DM5000 microscopes to which

these operating instructions belong, and which

have the identifying letter B, are intended for

biological routine and research applications.

This includes examining specimens taken from

the human body for the purpose of gaining infor-

mation about physiological or pathological con-

ditions or inborn anomalies, or testing for safety

and compatibility for potential recipients, or for

monitoring therapeutic measures.

The microscopes that have the identifying let-

ters M or P are intended for materials science,

geological or mineralogical examinations.

The above-named microscopes comply with the

Council Directive 98/79/EEC concerning in vitro

diagnostics. They also conform to the Council

Directives 73/23/EEC concerning electrical ap-

paratus and 89/336/EEC concerning electromag-

netic compatibility for use in an industrial envi-

ronment.

Caution!

The manufacturer assumes no liability for

damage caused by, or any risks arising from

using the microscopes for other purposes

than those for which they are intended or

not using them within the specifications of

Leica Microsystems CMS GmbH.

In such cases the declaration of conformity

shall cease to be valid.

Caution!

These (IVD) instruments are not intended for

use in the patient environment defined by

DIN VDE 0100-710. Nor are they designed to

be combined with medical instruments in

accordance with EN 60601-1. If a

microscope is electrically connected to a

medical instrument in accordance with

EN 60601-1, the requirements defined in

EN 60601-1-1 shall apply.

3. Safety notes

3.1 General safety notes

This safety class 1 device was built and tested

in accordance with the safety regulations for

electrical measuring, control, regulating and

laboratory devices in accordance with

EN 61010-2-101:2002

EN 61010-1:2001

IEC 1010-1:2001

Caution!

In order to maintain this condition and to en-

sure safe operation, the user must follow the

instructions and warnings contained in this

operating manual.

Caution!

The devices and accessories described in

this operating manual have been tested for

safety and potential hazards.

The responsible Leica affiliate or the main

plant in Wetzlar, Germany, must be consult-

ed whenever the device is altered, modified

or used in conjunction with non-Leica

components that are outside of the scope of

this manual.

Unauthorized alterations to the device or

noncompliant use shall void all rights to any

warranty claims and void product liability!

3. Safety notes

Caution!

The power plug may only be plugged into an

outlet equipped with a grounding contact.

Do not interfere with the grounding func-

tion by using an extension cord without a

ground wire. Any interruption of the ground

wire inside or outside of the device, or re-

lease of the ground wire connection, can

cause the device to become hazardous.

Intentional ground interruption is not permit-

ted!

Caution!

Through connection to the grounding con-

nection, ancillary equipment with its own

and/or extra power supply may be brought

to the same ground wire potential. For con-

nections without a ground connector, Leica

Service must be consulted.

90-250 V~

50-60 Hz

max. 155VA

2xT2A (IEC 127)

10-36°C

max. 80% to 30°C

90-250 V~

50-60 Hz

max. 290VA

T6.3 A

(IEC 60127-2/3)

15-35°C

max. 80% to 30°C

3.2 Electrical safety

General specifications

Leica CTR5000 electronics box (for DM5000 B)

For indoor use only.

Supply voltage:

Frequency:

Power input:

Fuses:

Ambient temperature:

Relative humidity:

Overvoltage category:

Pollution degree:

Microscope

For indoor use only.

Supply voltage:

Frequency:

Power input:

DM4000

DM4500

DM5000

Fuses:

DM4000

DM4500

DM5000

Ambient temperature:

Relative humidity:

Overvoltage category:

Pollution degree:

ebq 100 supply unit*

For indoor use only.

Supply voltage:

Frequency:

Power input:

Fuses:

Ambient temperature:

Relative humidity:

Overvoltage category:

Pollution degree:

(see enclosed manual)

90-250 V~

50-60 Hz

max. 180 VA

max. 290VA

T6.3 A (IEC 60127-2/3)

See CTR5000

15-35°C

max. 80% to 30°C

3. Safety notes

Caution!

Never use any fuses as replacements other

than those of the types and the current rat-

ings listed here. Bypassing fuse holders is

not permitted.

Caution!

The microscope’s electrical accessory com-

ponents are not protected against water.

Water can cause electric shock.

Caution!

Protect the microscope from excessive tem-

perature fluctuations. Such fluctuations can

lead to the accumulation of condensation,

which can damage the electrical and opti-

cal components.

Operating temperature: 15-35°C

Caution!

Before exchanging the fuses or lamps, be

absolutely certain to switch off the main

power switch and remove the power cable.

3.3 Disposal

Once the product has reached the end of its ser-

vice life, please contact Leica Service or Sales

about disposal.

Please observe and comply with the national

and federal laws and regulations that are equiv-

alent to EU guidelines such as WEEE.

Note!

Like all electronic devices, the microscope,

its accessory components and consumables

must never be disposed of with general

household waste.

4. Overview of the instrument

Specification

Contrast methods

Transmitted light axis

Incident light axis

Z pinion

Objective turret

Leica DM4000 B

Leica DM5000 B

• Transmitted light:

DM4000 B: BF, DF, PH, Pol

DM5000 B: and ICT (mot.)

• Incident light: Fluorescent

• Integrated into the stand

• Motorized 5x filter turret disk

(DM5000 B 8x optional)

• With FIM (fluorescence in-

tensity manager) for reduc-

ing the light intensity in 5 in-

crements

• Mechanical booster lens for

increasing fluorescence in-

tensity

• Motorized shutter

• Manual, fully encoded

• DM4000 B: 6x/7x with

M25 thread

DM5000 B: 7x (M25)

DM5000 B: With object prism

disk (3 positions)

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

• Transmitted light:

DM4000 M: BF, DF, PH, ICT,

Pol

DM4500 P: BF, DF, PH, ICT,

Pol (conoscopy)

• Incident light:

BF, DF, ICR, Pol, Fluo

• Integrated into the stand

• Motorized 4x filter turret

disk

• Automatic

illumination manager

• DM4000 M: motorized

shutter

• Manual, fully encoded

• DM4000 M: 6x with

M32 thread

DM4500 P: 6x with

M25 thread, centerable,

encoded

• Receptacle for DIC prisms

and Pol compensators

(for DM4000 M: optional)

• Automatic illumination manager (mot. aperture diaphragm

and field diaphragm, mot. intensity control)

• Automatic constant-color intensity control

• Motorized shutter

• Manual

4. Overview of the instrument

Specification

X/Y stage

Tube

Condenser

Magnification changer

(optional)

Controls

Computer interface

Software tools

Leica DM4000 B

Leica DM5000 B

• Manual

• Replaceable specimen stage

• Coaxial drive length: 155 mm

• Manual

• 3x fully encoded

• 1x; 1.25x; 1.6x

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

• Manual

• DM4000 M:

•

Replaceable specimen stage

•

Coaxial drive length: 140 mm

DM4500 P:

• Replaceable Pol stage

• Manual

• 3x fully encoded

• 1x; 1.5x; 2x

• Motorized condenser head

• Condenser disk for the light ring, DF-Stop, DIC prisms

• Automatic Köhler illumination

• Optional polarizer (integrated and motorized)

• Operating buttons on the stand for all motorized

microscope functions

• Additional variable multifunction keys

• Focus wheels

• LCD

• DM5000 B with Leica SmartTouch

• USB2.0

• Leica Application Suite (LAS)

for WindowsTM 2000, XP, Vista

• With plug-ins for:

• Microscope and camera configuration

• Microscope and camera control

• Image acquisition

• Manual or motorized (DM4500P: manual)

• Optionally with one or two camera outputs

• DM4500 P: conoscopy module

(tube optics HC P1x/1.6x with Bertrand lens, encoded)

4. Overview of the instrument

Leica DM4000 B

Leica DM5000 B

Only for the Leica DM5000 B:

Separate operating unit with a

power supply for 100 W halogen

lamps. See → p.10

(Electrical safety)

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

Specification

Electronics box

Leica CTR5000

4. Overview of the instrument

1Eyepiece

2Eyepiece tube

3Tube

4Objective turret with objectives

5Specimen stage with specimen holder

6Condenser

7LCD

8Field diaphragm operating buttons

9Transmitted light / incident light switch

10 Aperture diaphragm operating buttons

11 Brightness adjustment buttons

12 Focus wheel with coarse and fine adjustment

13 Variable function keys (preset at the factory)

14 Lamp adjustment window

Fig. 1 Left side of the stand with the advanced AET22 ErgoTube

891011

4. Overview of the instrument

15 Lamp housing for incident light

16 Lamp housing for transmitted light

17 Transmitted light filter, optional

18 Transmitted light filter, optional

19 Variable function keys (preset at the factory)

20 x/y coaxial drive, adjustable height

21 Handwheel for fine focus

22 Motorized filter block exchanger

Fig. 2 Right side of the stand with the advanced ErgoTube AET22

21 20 19 18 17

5. Unpacking the microscope

The microscope is delivered in two packages.

The stand package contains the following com-

ponents:

• Stand with integrated incident light axis and

objective turret

• Specimen stage with stage bracket

• Power cable and PC connecting cable

• CD with Leica Application Suite (LAS) soft-

ware package

• Instructions and list of microscope default

settings

The system package contains the microscope’s

accessories:

• Tube

• Eyepieces

• Objectives

• Condenser

• Lamp housings with accessories

• Assembly tools

• Additional microscope accessories such as

filter cubes, etc. depending on product con-

figuration

The external ebq 100 supply unit* is delivered in

a separate package.

For the Leica DM5000 B microscope:

The Leica CTR5000 electronics box is delivered

in a separate package.

First, carefully remove all components from the

transportation and packaging materials.

Note:

If at all possible, avoid touching the lens surfac-

es of the objectives. If fingerprints do appear on

the glass surfaces, remove them with a soft

leather or linen cloth. Even small traces of finger

perspiration can damage the surfaces of optical

devices in a short time. See the chapter on "Care

of the microscope" →

p. 77 for additional in-

structions.

Caution!

Do not connect the microscope or periph-

erals to an AC power source at this time

under any circumstances!

5. Unpacking the microscope

Installation location

Work with the microscope should be performed

in a dust-free room, which is free of oil vapors

and other chemical vapors, as well as extreme

humidity. At the workstation, large tempera-

ture fluctuations, direct sunlight and vibrations

should be avoided. These conditions can distort

measurements and micrographic images.

Allowable ambient conditions

Temperature 15-35°C

Relative humidity maximum 80% up to 30°C

Microscopes in warm and warm-damp climatic

zones require special care in order to prevent

the build up of fungus.

See the chapter on "Care of the microscope" →

p. 77 for additional instructions.

Caution!

Electrical components must be assembled at

least 10 cm away from the wall and from

flammable substances.

Transport

For shipping or transporting the microscope

and its accessory components, the original

packaging should be used.

As a precaution to prevent damage from vibra-

tions, the following components should be dis-

assembled and packaged separately:

• Unscrew the objectives.

• Remove the condenser.

• Remove the specimen stage.

• Remove the lamp housings.

• Disassemble the burner of 106 z lamp housing.

• Remove all moving or loose parts.

6. Assembly

6. Assembling the microscope

The microscope components are logically as-

sembled in this order:

• Specimen stage

• Condenser with condenser head

• Tube

• Eyepieces

• Objectives

• Lamp housings with light sources

• Equipment for the incident light turret disk*

Only a few commonly used screwdrivers and

keys are necessary for assembly; these are in-

cluded in the delivery package.

When using intermediate systems and optical

accessories, the sequence may vary.

In this case, read chapter,

"6.10 Optional accessories" →

p.33

6.1 Specimen stage

Caution:

Never install objectives before assembling the

stage.

• Place the specimen holder on the stage and

fasten it with the two screws (3.1).

• Using the condenser height adjuster (3.2), turn

the condenser holder completely upwards,

i.e. as close to the stage as possible.

• Loosen the stage clamp (3.3) slightly.

Fig. 3 Mechanical object stage

1Locking screws for specimen holder

2Condenser height adjuster

3Stage clamp

6. Assembly

•Only for DM4500 P:

Pol attachable mechanical stage*

Adjust the attachable mechanical stage so

that the fastening screw is visible below the

holes (4a.1). Set the attachable mechanical

stage in the guide holes on the rotating stage

and tighten the fastening screw using the

hexagonal key.

Attachable mechanical stage*

The attachable mechanical stage can be in-

stalled on the left, on the right or on the front

(not pictured). The two clamping screws fas-

ten it into place.

• From above, set the stage clamp onto the

dovetail guide (4.2) and push the stage down-

wards until the upper end of the dovetail

guide is tightly fastened to the upper end of

the stage clamp.

• Firmly tighten the stage clamp (4.1).

Note:

For thicker specimens (Leica DM4000 M) the

stage can be set to a correspondingly lower level.

Fig. 4 Assembling the stage

1Stage clamp

2Dovetail guide

Fig. 4a Pol rotating stage* and Pol 3 attachable mechani-

cal stage*

1Holes for the fastening screw.

2Lever for the holder for glass slides of various formats,

which can be turned inward and outward

3Storage for the centering key

4Locking button pair

545° click stop

6Clamping system for the stage rotation

6. Assembly

6.2 Condenser

• Screw the condenser head into the condenser.

• Using the condenser height adjuster (5.4), turn

the condenser holder (5.1) downward as far

as it will go.

• Unscrew the clamping screw for the con-

denser (5.3) far enough so that the condenser

can be inserted from the front.

• From the front, insert the condenser into the

condenser holder as far as it will go. On the

underside of the condenser, there is an orien-

tation pin (6.1) that must be locked into place

in the guiding notch (7.1).

• Tighten the condenser’s clamping screw (5.3)

until the condenser locks into place.

• Connect the condenser over the connection

(8.1) with the stand.

Fig. 5 Condenser holder

1Condenser holder

2Condenser centering

3Clamping screw for the condenser

4Condenser height adjuster

Fig. 6

Underside of condenser

1Orientation pin

Fig. 7 Condenser holder

1Guiding groove

Fig. 8 Condenser connection

1Condenser cable socket

Note:

The condenser must be centered before using

the microscope.

→

Köhler illumination p. 41.

23 4 1

6. Assembly

6.3 Tube and eyepieces

The tube is mounted on the stand either directly

or with the use of intermediate modules. The

side clamping screw fastens it into place (9b.1).

•For the MBDT motorized tube only:

Remove the transport anchor (9a.1) on the un-

derside of the tube.

• Partially unscrew the clamping screw (9b.1).

• Insert the tube into the circular receptacle

(dovetail ring).

• Retighten the clamping screw (9b.1).

•For the MBDT motorized tube only:

Connect the tube to the stand with the con-

nector bushing (10.1).

Fig. 9b Fastening the tube

1Clamping screw

Fig. 10 Motorized tube connection

1Connector socket

Fig. 9a Underside of the tube

1Transport anchor

• The eyepieces are inserted into the eyepiece

tubes on the tube.

•For the BDTP tube only:

The Pol eyepieces are inserted into the eye-

piece tubes (using the locking groove).

6. Assembly

6.4 Objectives

The receptacles on the objective turrets are

numbered (Fig. 11). Based on your equipment,

the individual objectives have already been as-

signed to specific positions at the factory.

For details on the exact positions of the objec-

tives, please refer to the enclosed identifica-

tion sheet.

Caution:

Close vacant threads in the turret with dust pro-

tection caps!

6.5 Light sources for the transmitted light axis

Caution!

Ensure that the lamp housing has been dis-

connected from the power supply. Unplug

the power plug and the power supply during

assembly.

Caution!

Light sources pose a potential irradiation risk

(glare, UV-radiation, IR-radiation). Therefore,

lamps have to be operated in closed hous-

ings.

Lamp housing 107/2

This lamp housing is used with a 12 V 100 W

halogen lamp, which is already mounted.

In case the lamp has to be removed:

• Remove the fastener screw on the housing

(Fig. 12).

• Remove the housing by pulling it upwards.

• Remove the lamp.

Fig. 11

Objective turret with engraved objective receptacles

6. Assembly

• Insert the new 12 V 100 W lamp (13.1) with the

dust cover straight into the socket until it

stops. Be sure that the lamp is inserted

straight.

• Remove the lamp’s dust cover.

Caution!

Do not remove the lamp’s dust cover until af-

ter you have installed the lamp. Avoid finger-

prints on the lamp.

• Replace the housing and fasten it in place us-

ing the fastening screw.

Fig. 12

Lamp housing 107/2

Releasing the

fastening screw

Fig. 13

Lamp housing 107/2

opened

1Mount with

halogen bulb

2Collector

Fig. 14 Rear view of the stand

1Incident light lamp housing receptacle

2Transmitted light lamp housing receptacle

312 V 100 W connection for transmitted light (symbol: )

412 V 100 W connection for incident light (symbol: )

• Place the lamp housing in the transmitted

light lamp housing receptacle (14.2) and fas-

ten it with the clamping screw on the side.

• Connect the lamp housing to the power supply

for transmitted light (symbol: ) (14.3).

234

6. Assembly

6.6 Light sources for the incident light axis

Caution!

Light sources pose a potential irradiation

risk (glare, UV-radiation, IR-radiation).

Therefore, lamps have to be operated in

closed housings.

Ensure that the lamp housing has been dis-

connected from the power supply. Unplug

the power plug and the power supply during

assembly.

During assembly work on xenon burners,

always wear the protective gloves and face

protection supplied (Fig. 15) (risk of explo-

sion).

Never touch the glass parts of the burner

with bare hands.

Never look directly into the beam path

(blinding hazard).

Lamp housing 106/106 z

This lamp housing is suitable for use with a 12 V

100 W halogen lamp or a variety of gas discharge

lamps.

Caution!

Make sure to follow the instructions and

safety notes of the lamp supplier.

Before changing lamps allow it to cool down

for at least 30 min.!

Fig. 16 106/106 z lamp housing (on the side, open)

1Cover raised

2Collector

312 V 100 W lamp or

gas discharge lamp in mount

4Reflector (mirror)

5, 6, 7 Adjusting screw for x-y reflector

8Fastening screw for the lamp mount

9Socket for contact plug

898

Fig. 15

Protective gloves and mask

6. Assembly

Fig. 17 Lamp mount with 12 V 100 W halogen bulb

Inserting the 12 V 100W halogen bulb into the

106/106 z lamp housing

• Unscrew the fastening screws of the cover

and flip the cover up (16.1).

• Unscrew the fastening screws of the lamp

mount (16.8) and pull out the mount (Fig. 17).

• Insert the lamp with the dust cover straight

into the socket until it stops.

Caution!

Do not remove the lamp’s dust cover until af-

ter you have installed the lamp. Avoid finger-

prints on the lamp.

• Remove the dust cover.

• Insert the lamp mount, with the burner in-

stalled, into the lamp housing and tighten it

with the screws (16.8).

• Close the lamp housing and retighten the fas-

tening screws.

• Place the lamp housing in the incident light

lamp housing receptacle (18.1) and fasten it

with the clamping screw on the side.

• Connect the lamp housing to the power supply

for incident light (symbol: ) (18.4).

Fig. 18 Rear view of stand

1Incident light lamp housing receptacle

2Transmitted light lamp housing receptacle

312 V 100 W connection for transmitted light (symbol: )

412 V 100 W connection for incident light (symbol: )

234

6. Assembly

Inserting gas discharge lamps (Hg and Xe) into

the 106/106z lamp housing

Hg and Xe lamps are powered by separate sup-

ply units.

Please also read the separate instruction manu-

al provided with these supply units.

The following gas discharge lamps may be used

and require different power supplies and lamp

mounts (Fig. 19):

Type Typical bulb life*

50 W high-pressure mercury burner (alternating current) 100 hrs.

100 W high-pressure mercury burner (direct current) 200 hrs.

100 W high-pressure mercury burner (direct current, type 103 W/2) 300 hrs.

75 W high-pressure xenon burner (direct current) 400 hrs.

* Please observe the data sheets of the lamp manufacturer.

6. Assembly

Caution!

Hg 50 burner:

After installation, the labeling must be up-

right.

If a glass melt nipple is present (19a.4), posi-

tion it by turning the burner so that the

nipple does not impede the beam path later,

but instead is positioned sideways.

Xe 75 burner:

Remove the burner’s dust cover (19b.5) after

you have installed the burner.

• To open the 106 z lamp housing, unscrew the

fastening screws on the cover.

• Remove the transport anchor (red plastic rod

in place of the burner) in the lamp mount. To

do so, remove the lower clamp (19.1). Pull up

the cooling element (19.3) and turn it to the

side. Detach the lower clamp system (19.2)

and remove the transport anchor.

• Install the burner in reverse order.

Fig. 19 a-c Lamp mounts for gas discharge lamps

1 Upper clamping system, 2 Lower clamping system, 3 Cooling element

4 Melt nipple for the Hg 50 arc lamp, 5 Dust cover for the Xe 75 arc lamp

Hg 50

Hg 100

Xe 75

6. Assembly

Fig. 22 Rear panel of the ebq 100 supply unit

1Lamp connection

• Insert the lamp mount, with the burner in-

stalled, into the lamp housing and tighten it

with the screws (20.8).

• Close the lamp housing and retighten the fas-

tening screws.

• Place the lamp housing in the incident light

lamp housing receptacle (21.1) and fasten it

with the clamping screw on the side.

• Connect the lamp housing to the external

power supply (22.1).

Fig. 20 106/106 z lamp housing (on the side, open)

1Cover raised

2Collector

312 V 100 W lamp or

gas discharge lamp in mount

4Reflector (mirror)

5, 6, 7 Adjusting screw for x-y reflector

8Fastening screw for lamp mount

9Socket for contact plug

898

Fig. 21 Rear view of the stand

1Incident light lamp housing receptacle

2Transmitted light lamp housing receptacle

312 V 100 W connection for transmitted light (symbol: )

412 V 100 W connection for incident light (symbol: )

234

6. Assembly

Fig. 25 Removing the front panel

1Filter receptacle

2Locking pin

3Front panel

Fig. 26 Inserting the filter or reflector cubes

1Mounting

Fig. 23 Filter cube,

front side

6.7 Equipping the incident light turret disk

The positions in the turret disk are numbered.

Depending on how they are equipped, the indi-

vidual filter and/or reflector cubes are set in

pre-assigned positions at the factory. For

details, check the identification sheet included

with your order.

Insert the filter and reflector cubes in the fol-

lowing manner:

• Never fit the incident light turret disk while

the microscope is in operation.

• Remove the face plate from the upper part of

the microscope (Fig. 25). Press the locking pin

(25.2) to turn the turret disk. When the locking

pin is released, the turret disk locks into place

again.

• With the holder facing you squarely, insert the

filter cube or reflector cube into the holder as

described in the identification sheet provided.

To do so, place the filter or reflector cube on

the right side and press it toward the left into

the mounting (Fig. 26).

• Press the locking pin (25.2) and turn the filter

turret to the next click stop.

• Make sure that the turret engages (the lock-

ing pin springs forward) and insert the next fil-

ter and/or reflector cube as described above.

• When all filters and reflector cubes have been

inserted, close the front cover plate again.

Fig. 24 Filter cube,

back side

6. Assembly

6.8 Polarizer and analyzer

Transmitted light polarizer: ICT/P

• Using the left clamping screw, fasten the ICT/P

transmitted light polarizer to the underside of

the condenser holder (Fig. 27).

• Make sure that the red index point on the

front of the polarizer is at 0.

• If necessary, insert the compensators (λ-, λ/4

plates or elliptical compensators) into the po-

larizer’s receptacle (Fig. 28) or into the com-

pensation slot.

Incident light polarizers:

R/P polarizer, rotating polarizer,

L/ICR polarizer, R/ICR polarizer

• Remove the plug cap on the right side of the

incident light axis (Fig. 29).

• Insert the polarizer into the receptacle until it

locks into place.

Caution:

Push the polarizer into the front receptacle only.

Motorized polarizer

• A motorized polarizer is already installed and

ready for operation in the DIC condenser.

Fig. 27 Assembly of the ICT/P transmitted light polarizer

1Clamping screw

Fig. 28 Inserting the compensators

Fig. 29 Inserting the polarizer

1The plug cap is replaced with the polarizer.

6. Assembly

Transmitted light and incident light analyzer

• Remove the plug cap on the left side of the

stand.

• Insert the analyzer into the receptacle until it

latches in place (Fig. 30).

Motorized analyzer

• Insert the analyzer cube into the correspond-

ing position on the filter turret as described in

section "6.7 Equipping the incident light turret

disk" → p. 30. For details on the proper

position for the analyzer cube, please refer to

the identification sheet provided.

Fig. 30 Inserting the analyzer

1The plug cap is replaced with the analyzer.

6.9 DIC prisms

• Insert the objective prism slide into the tube

slot (Fig. 31.1). The code letter must match the

code letter on the objective.

• In the Leica DM5000 B microscope, the DIC

prisms are already installed in the DIC disk

above the objective turret (Fig. 68).

Fig. 31 Inserting the objective prism slide

1Objective prism slide

6. Assembly

6.10 Optional accessories

ErgoModule

For raising the eye level of the tube opening, the

ErgoModule may be used.

It is fastened in place with the side clamping

screw.

Mirror housing

• Place the mirror housing directly onto the

lamp housing receptacle on the back of the

stand and attach it using the side clamping

screw.

• Place the lamp housing(s) on the mirror hous-

ing and fasten it using the accompanying lat-

eral clamping screw.

Fig. 32

1Inserting the booster lens

Booster lens / excitation manager

• Insert the filter slide into the front receptacle

on the right side of the stand (Fig. 32.1, 33.1).

6. Assembly

Fig. 34 Rear side of the Leica DM4000 B/M stand

1Power switch

2Power supply

Fig. 35 CTR5000 electronics box connector panel

1Microscope connection

2Power supply

Fig. 36 Rear side of the Leica DM5000 B stand

1Connecting to the CTR5000 electronics box

6.11 Connection to the power supply

After completing the assembly work, connect

the stand to the power supply using the power

cable (Fig. 34.2).

6.12 Connection to the CTR5000 electronics box

For the Leica DM5000 B only:

• Connect terminals (35.1) and (36.1) to the 25-pin

microscope cable.

• Connect the electronics box to the power sup-

ply using the power cable (35.2).

7. Startup

7.1 Functional principle

The microscope's most important functions may be easily accessed using function keys.

• The microscope may be switched between various contrast methods by pressing a button.

• The microscope recognizes the selected objective and associated contrast method. There-

fore, the values for intensity (INT), aperture diaphragm (AP) and field diaphragm (FD) are

always set correctly.

• The INT, AP and FD values can be adjusted individually. Manual adjustments overwrite the

previous settings. The current setting is saved.

• The INT, AP and FD values are always based on the currently activated light axis (transmitted

light or incident light).

• In addition to the preset function keys for INT, AP and FD, there are also variable function

keys.

Variable function keys:

• At the time of delivery, these function keys are assigned functions suitable to the configura-

tion of your microscope.

• However, the functions can be reprogrammed and/or adapted to your specific requirements.

Note: (reset function)

The microscope can be reset to its factory default programming:

•

When the microscope is switched off, press all 3 variable function keys on the left stand section.

• Switch on the power for the stand.

• Hold the buttons until the initialization is complete.

• The standard indicator appears in the display.

• Switch the instrument off and back on. The settings are now saved.

7. Startup

Possible assignments for the function keys

For Leica DM4000 B/DM5000 B:

Function button Function

BF Bright field transmitted light

PH Phase contrast transmitted light

ICT Interference contrast, transmitted light

DF Dark field transmitted light

POL Polarization transmitted light

CHANGE TL Switches through all transmitted light contrast methods

INT ↑Increases the brightness (transmitted light)

INT ↓Reduces the brightness (transmitted light)

AP ↑Opens the aperture diaphragm (transmitted light)

AP ↓Closes the aperture diaphragm (transmitted light)

FD ↑Opens the field diaphragm (transmitted light)

FD ↓Closes the field diaphragm (transmitted light)

SHUTTER TL Opens/closes the transmitted light shutter

FLUO Fluorescence (last filter cube)

CUBE 1 Chooses the fluorescence cube on position 1

CHANGE CUBE Switches through the fluorescence cube clockwise (1 → 4)

CHANGE CUBE Switches through the fluorescence cube counterclockwise (4 → 1)

SHUTTER FLUO Opens/closes the fluorescence shutter

INT FLUO ↑ Increases the brightness (fluorescence)

INT FLUO ↓Reduces the brightness (fluorescence)

FD FLUO ↑Opens the field diaphragm (fluorescence)

FD FLUO ↓Closes the field diaphragm (fluorescence)

COMBI Combination method

(PH fluorescence or ICT fluorescence)

CHANGE COMBI Switches through all combination methods

CHANGE TUBE Switches through various types of beamsplitting

100% VIS 100% documentation port

50:50 50% documentation port / 50% camera

100% CAMERA 100% camera

7. Startup

For Leica DM4000 M/DM4500 P:

Function button Function

BF Bright field incident light

ICR Interference contrast, incident light

DF Dark field incident light

POL Polarization incident light

CHANGE RL Switches through all incident light contrast methods

INT ↑Increases the brightness (incident light)

INT ↓Reduces the brightness (incident light)

AP ↑Opens the aperture diaphragm (incident light)

AP ↓Closes the aperture diaphragm (incident light)

FD ↑Opens the field diaphragm (incident light)

FD ↓Closes the field diaphragm (incident light)

SHUTTER RL DM4000 M only: Opens/closes the incident light shutter

FLUO Fluorescence (last filter cube)

CUBE 1 Chooses the fluorescence cube on position 1

CHANGE FLUO Switches through all filter cubes

CONOS DM4500 P only: The Bertrand lens is in the beam path

(conoscopic beam path)

FOCUS FINDER Finds the smallest incident light field diaphragm

and toggles back to the original field diaphragm.

BF TL Bright field transmitted light

BF-POL DM4500 P only: Polarization transmitted light (conoscopy)

INT ↑Increases the brightness (transmitted light)

INT ↓Reduces the brightness (transmitted light)

AP ↑Opens the aperture diaphragm (transmitted light)

AP ↓Closes the aperture diaphragm (transmitted light)

FD ↑Opens the field diaphragm (transmitted light)

FD ↓Closes the field diaphragm (transmitted light)

COMBI Combination methods (BF and BF TL)

CHANGE TUBE Switches through various types of beamsplitting

100% VIS 100% documentation port

50:50 50% documentation port / 50% camera

100% CAMERA 100% camera

7. Startup

Fig. 37 Display after initialization

7.2 Switching on the unit

• First, swivel the objective with the lowest

magnification into position.

• Switch on the microscope or CTR5000. All mo-

torized microscope components will then run

through an initialization phase.

After the initialization is complete, the display on

the stand (Fig. 37) shows the current

microscope setting

Components such as diaphragms, condensers,

light and phase rings have been pre-centered at

the factory. It may be necessary to correct the

centering after the microscope has been trans-

ported and assembled.

Before proceeding with the necessary steps,

first familiarize yourself with the stand’s display

and control panel.

Caution!

After turning on the gas discharge lamp, the

burner must be immediately adjusted. There-

fore, do not turn on the power supply unit

yet. First, work in transmitted light in order to

familiarize yourself with the microscope’s

controls.

Note:

The Leica DM4500 P microscope is equipped at

the factory with an encoded conoscopy module.

• Moving the Bertrand lens activates the cono-

scopic or orthoscopic beam path. The status

is indicated on the display with the methods

"Conos" or "TL Pol".

7. Startup

7.3 The display

(Leica DM4000 B/

DM4000 M/DM4500 P)

The screen displays the microscope’s current

settings. The content of the display depends on

the features of the individual microscope. In the

first column, corresponding symbols indicate

the type of information: contrast method, magni-

fication, light intensity, diaphragms, light split-

ting for photo tubes.

Please see the abbreviation index for a list of

abbreviations used, →

p. 36f.

Contrast method

In the first row, you find an indication of the ac-

tive light axis (incident light or transmitted light)

of the current contrast method and, if used, the

current filter cube.

The shutter status display for the transmitted

light or incident light shutter:

Transmitted light shutter is open

Transmitted light shutter closed

Incident light shutter is open

(for fluorescence only)

Incident light shutter is closed

(for fluorescence only)

Magnification

The current objective magnification (OBJ),

sometimes followed by the re-magnification of

the magnification changer*, appears along with

the total magnification:

Σ = Objective x re-magnification x eyepiece

↑

Light intensity

The current brightness setting is graphically de-

picted by a beam. In addition, the light intensity

is specified in 20 (coarse) or 255 (fine) incre-

ments →

p. 59.

Diaphragm

The values for the field diaphragm (FD) and the

aperture diaphragm (AP) are indicated numeri-

cally. The field diaphragm in the incident light

may be either round or rectangular. Accordingly,

the FD designation is set in parentheses or in

brackets: (FD) or [FD].

Note:

When using a digital camera, angular field dia-

phragms are recommended.

Light distribution

If a motorized tube is present, the light division

between ocular (Eye) and photo port (Docu) is

indicated in %.

Note:

The display may flash after the initialization

phase or even during microscopy. This always

occurs when the contrast method selected can

not be performed with the microscopic settings.

For example, an objective may be rotated in that

is not suited to the contrast method chosen.

Then check your settings.



↓

7. Startup

The AP buttons (38.4) for the aperture dia-

phragm and FD (38.2) for the field diaphragm

open and close their respective diaphragms.

Note:

Changes to the light intensity as well as

aperture and field diaphragm settings are stored

for the individual objectives and contrast

methods.

Variable function buttons

The variable function buttons are assigned

functions at the factory that are appropriate to

the features of your microscope. They are

labeled accordingly. For details on button

assignments, please refer to the included

identification sheet.

For information on the abbreviations used,

please refer to the list → p. 36f.

Note:

The Leica Application Suite (LAS) module "Con-

figuration" is required for changing the key as-

signments.

7.4 The function keys

There is a row of function keys both on the right

and left side of the stand. These can be broken

down into fixed and variable buttons. The vari-

able function keys have different functions de-

pending on the features of the individual micro-

scope.

Fixed function keys on the left side of the stand

The TL/IL button (38.1) toggles between the in-

cident light and transmitted light axis. The

contrast method last used with a given axis is

restored when switching.

The INT buttons (38.3) adjust the light intensity.

The adjustment can be made in coarse or fine

steps. Pressing both INT buttons at the same

time toggles between coarse and fine adjust-

ment.

The display indicator changes accordingly →

p. 59.

Fig. 38 Fixed function keys (left side of stand)

1Toggling between transmitted light / incident light

2Aperture diaphragm

3Light intensity

4Field diaphragm

7. Startup

Fig. 40 Condenser centering

1Centering screws

7.5 Köhler illumination

7.5.1 Transmitted light

Suitable aperture and field diaphragm values

have been preset for each objective. The con-

denser is also already centered at the factory.

However, depending on how the condenser is

disassembled and reassembled, it may be nec-

essary to re-center the condenser in some cas-

es. Therefore, check the condenser centering.

The following procedure is provided for the

transmitted light-bright field illumination.

• Select an objective with moderate magnifica-

tion (10x-20x).

• Push the TL/IL button (38.1) as needed to acti-

vate the transmitted light axis. "TL" appears in

the first line of the display.

Note on DM4500 P: Ensure that the Bertrand

lens is swiveled outwards.

Fig. 39 Stage with specimen holder

1Object motion (X direction)

2Object motion (Y direction)

3Specimen holder

4Condenser height adjuster

• Press the BF button to activate the bright field

contrast method (one of the variable function

keys behind the focus wheel).

"TL BF" appears in the first line of the display.

• Insert the specimen in the stage’s specimen

holder (39.3).

• Focus on the specimen. The focus wheel on

the left side of the stand allows focus adjust-

ment in course and fine increments. On the

right side of the stand, there is also a focus

wheel for fine focusing.

• Adjust the light intensity with the INT buttons

(38.3).

• Close the field diaphragm with the FD function

key (38.2) until the edge of the diaphragm ap-

pears in the specimen plane.

7. Startup

• Using the condenser height adjuster (39.4),

adjust the condenser until the edge of the

field diaphragm appears in sharp relief.

• If the image does not appear in the middle of

the field of view (41c), the condenser must be

moved into the middle of the field of view with

the help of the two centering screws (40.1).

• Open the field diaphragm just enough for it to

disappear from the field of view (41d).

Caution:

The condenser height adjustment depends on

the thickness of the specimen. It may need to be

adjusted for each specimen.

Fig. 41 Köhler illumination

aField diaphragm not focused, not centered

bField diaphragm focused, but not centered

cField diaphragm focused and centered

Diameter is too small, however

dField diameter (light) = Field diameter (view)

(Köhler illumination)

7.5.2 Incident light

Suitable aperture and field diaphragm values

have been preset for each objective. The inci-

dent light module has also been centered at the

factory.

However, it may be necessary to readjust the

incident light module in some cases after trans-

porting and setting up the stand. Therefore,

check the aperture and field diaphragm center-

ing.

The following procedure is provided for the inci-

dent light-bright field illumination.

• Select an objective with moderate magnifica-

tion (10x-20x).

• Activate the incident-light axis with the TL/IL

button (38.1).

"IL" appears in the first line of the display.

• Select the bright field contrast method by

pressing the IL-BF button (DM4000 M) or se-

lect fluorescence by pressing the FLUO button

(DM4000 B, DM5000 B).

These functions can be assigned to the vari-

able function keys on the stand.

IL BF / FLUO appears in the first line of the dis-

play.

• Insert the specimen in the stage’s specimen

holder (39.3).

• Focus on the specimen with the focus wheels.

• Adjust the light intensity using the INT buttons

(38.3).

7. Startup

Adjusting the field diaphragm

• Close the field diaphragm with the FD button

(38.4) or manually until the edge of the dia-

phragm (round or rectangular) appears in the

field of view.

• If the border of the field diaphragm does not

appear in the middle of the field of view, the

field diaphragm must be moved into the

middle of the field of view using the two

centering screws (42a.1) on the right side of

the stand.

• Use the function buttons FD (38.4) to open the

field diaphragm to the point that they just dis-

appear from the field of view.

• We recommend the use of a rectangular field

diaphragm when using a digital camera.

Match the size of the diaphragm to the chip

size of the camera.

Adjusting the aperture diaphragm

(for DM4000 M and DM4500 P only)

• Remove one eyepiece (e.g. right).

• Close the aperture diaphragm with the AP

function key (38.2) until the edge of the dia-

phragm appears in the exit pupil of the objec-

tive (aperture diaphragm plane).

• If the image is not in the middle of the field of

view of the exit pupil, move the position of the

aperture diaphragm to the center of the exit

pupil using the two centering screws (42b.2)

located on the left side of the stand.

• Open the aperture diaphragm to cover 2/3 of

the field of view.

Fig. 42a Adjusting the field diaphragm in the incident light

axis

1Adjusting screws for moving the field diaphragm

Fig. 42b Adjusting the aperture diaphragm in the incident

light axis

1Adjusting screws for moving the aperture diaphragm

7. Startup

Fig. 44a Phase contrast centering procedure

PH=phase contrast ring, LR=light ring

aCondenser in bright field (BF) position

bCondenser in phase contrast (PH) position

Light ring (LR) not centered

cLight ring and phase ring centered

Fig. 43 Focusing telescope

1Adjustable eyelens

2Clamping ring for fixing the focus position

ab c

7.6 Checking the phase contrast rings

If your microscope is equipped for the use of

phase contrast, the light rings that fit the objec-

tives are built into the condenser.

The light rings are already centered in the facto-

ry. However, the centering should be rechecked.

Note:

Every objective is assigned its own light ring in

the condenser disk. Therefore, a check must be

performed for each objective. When rotating in

an objective that is suitable for phase contrast,

the corresponding light ring is set automatically.

• Press the BF (bright field) button (one of the

variable function keys, to the left behind the

focus wheels).

• In the place of an eyepiece, insert the focus-

ing telescope (Fig. 43) into the observation

tube.

• Rotate the phase contrast objective with the

lowest magnification into place.

• Focus on the specimen with the focus wheel .

• Focus the ring structure (44a.a) by slightly

loosening the clamping ring (43.2) and moving

the eyelens (43.1).

• Retighten the clamping ring.

• Press the PH (Phase Contrast) button. The

ring diaphragm (light ring) in the condenser is

turned inward.

• If the light ring and the phase ring are not

shown as arranged in Fig. 44a.c, the light ring

must be centered.

7. Startup

Fig. 45 Reflector cube for lamp adjustment

• Insert the centering key through the corre-

sponding openings (44b.1) on both sides of the

condenser.

• Turn the centering key until the dark ring

(phase ring in the objective) is congruent with

the slightly narrower bright ring (light ring in

condenser) (44a.c).

Note:

When changing the objective, the centering key

must no longer be in the corresponding open-

ings.

• Repeat the process for all other phase con-

trast objectives.

• Always remove the centering keys after the

centering procedure.

Fig. 44b Light ring centering

1Centering key in the phase contrast centering hole

2Polarization contrast centering hole

7.7 Setting the motorized polarizers

(DM4500 P/DM5000 B)

• Select the POL method (one of the variable

function keys on the stand or on the Leica-

Screen).

• Insert the centering key into the correspond-

ing openings (44b.2) on the condenser.

• Set the optimum extinction (max. darkness).

7.8 Adjusting the light sources

Transmitted-light axis (TL) with lamp housing

107/2

The lamp housing 107/2 with a 12 V 100 W halo-

gen lamp is fixed. Centering the lamp is not re-

quired.

7. Startup

Incident-light axis (IL) with lamp housing 106 z

•

When a supply unit is used, it is turned on first.

• Activate the incident-light axis with the TL/IL

function button. FLUO (Leica DM4000 B/

DM5000 B) or IL (Leica DM4000 M/DM4500 P)

appears in the display.

• Insert the lamp adjustment reflector (Fig. 45)

in the filter turret in place of a filter cube.

Make sure to switch off the instrument first.

(See →

p. 30).

Make a note of the designation of the re-

placed filter cube.

Note:

To avoid faulty adjustments, it is a good idea to

remove the filter cube located at the left of the

reflector cube as well.

• Turn the reflector into the beam path.

The reflector has reached the correct position

when the name of the exchanged filter cube is

shown in the upper right of the display.

Caution!

Never look directly into the beam path!

Beware of the glare hazard when switching

to reflector BF or Smith!

Caution!

Light sources pose a potential irradiation

risk (glare, UV-radiation, IR-radiation).

In the lamp housing 106z, the direct image of the

filament (in halogen lamps) or the arc (in gas dis-

charge lamps) and its reflection are focused sep-

arately and adjusted in relation to one another.

On the left side of the microscope, there is an

adjustment window (1.14, p. 15) for mapping the

light source.

Adjust the lamp as follows while observing the

light source in the adjustment window.

Fig. 46 106 z lamp housing

1Lamp height adjustment

2.4 Mirror image height and side adjustment

3Focusing the reflector

5Lamp side adjustment

6Collector (focusing of the lamp image)

516

7. Startup

Centering the 12 V 100 W halogen bulb

• In the adjustment window, you see the direct

filament image and the mirror image, which as

a rule are shifted together.

• Focus the direct filament image with the col-

lector (46.6).

• Use the adjusting buttons on the rear side of

the lamp housing (46.2, 46.4) to rotate the mirror

image of the lamp filament to the side or com-

pletely out of the beam path. The lamp fila-

ment’s focused image remains visible (Fig. 47).

• Adjust the direct filament image using the ad-

justing knobs (46.1) and (46.5) so that the cen-

tering surface is halfway covered (Fig. 48).

• Then rotate the mirror image of the lamp fila-

ment using the adjusting knobs (46.2) and

(46.4), and focus it using the reflector (46.3).

• Align the mirror image symmetrically to the fila-

ment image (Fig. 49). To do so, again use the

adjusting knobs (46.2) and (46.4).

• Defocus the image with the collector head

(46.6) until the filament image and mirror im-

age are no longer recognizable and the image

is uniformly illuminated.

• Replace the lamp adjustment reflector with

the original filter cube.

Note:

Make sure to switch off the instrument.

Fig. 47 Direct lamp filament image focused,

but not centered

(in reality, the image is less focused)

Fig. 48 Direct lamp filament image in target position

(in reality, the image is less focused)

Fig. 49 Direct lamp filament image and mirror image in

target position

(in reality, the image is less focused)

7. Startup

Centering the Hg 50 W Mercury Lamp

• The adjustment window shows the direct im-

age of the arc and its mirror image. These are

generally not in alignment with one another.

• Focus the direct image with the collector (46.6).

• Use the adjusting buttons on the rear side of

the lamp housing (46.2, 46.4) to rotate the mir-

ror image of the arc to the side or completely

out of the beam path. The arc’s focused image

remains visible (Fig. 50).

• Use the adjusting buttons (46.1) and (46.5) to

place the direct arc image right or left on an

imaginary center line of the centering plane

(Fig. 51).

• Then rotate the mirror image of the arc with

the adjusting knobs (46.2) and (46.4), and fo-

cus it using the reflector (46.3).

• Orient the mirror image symmetrically to the

direct image (Fig. 52). To do so, again use the

adjusting knobs (46.2) and (46.4).

• Using the collector, defocus the image with

the collector head (46.6) until the arc image

and mirror image are no longer recognizable

and the image is uniformly illuminated.

• Replace the lamp adjustment reflector with

the original filter cube.

Fig. 52 Direct arc image and mirror image in target

position

(in reality, the image is less focused)

Fig. 51 Direct arc image in target position

(in reality, the image is less focused)

Fig. 50 Direct arc image focused but not centered

(in reality, the image is less focused)

7. Startup

Fig. 55 Direct arc image and mirror image in target

position

(in reality, the image is less focused)

Centering the Hg 100 W and Xe 75 W

mercury lamps

• The adjustment window shows the direct im-

age of the arc and its mirror image. These are

generally not in alignment with one another.

• Focus the direct image with the collector (46.6).

• Use the adjusting buttons to pivot the arc’s

mirror image on the rear side of the lamp

housing (46.2, 46.4) to the side or completely

out of the beam path. The arc’s focused image

remains visible (Fig. 53).

• Use the adjusting buttons (46.1) and (46.5) to

place the direct arc image in the middle of the

centering plane, whereby the bright tip of the

arc, the focal spot, should lie slightly outside

of center (Fig. 54).

• Then pivot the arc’s mirror image with the ad-

justing knobs (46.2) and (46.4), and focus it us-

ing the reflector (46.3).

• Orient the mirror image symmetrically to the

direct image (Fig. 55). To do so, again use the

adjusting knobs (46.2) and (46.4).

The V-shaped irradiation of the direct image

and mirror image arcs can be superimposed.

Caution!

The bright tips of the arcs, the focal spot,

must never be projected onto each other, as

this results in a danger of explosion by over-

heating.

Fig. 54 Direct arc image in target position

(in reality, the image is less focused)

Fig. 53 Direct arc image focused but not centered

(in reality, the image is less focused)

7. Startup

Caution!

In older lamps, the structure of the arc is no

longer clearly recognizable. The image is

then more like that of a HG 50 lamp. The im-

age and mirror image can no longer be su-

perimposed exactly. In this case, align both

images.

• Using the collector, defocus the image with

the knob (46.6) until the arc image and mirror

image are no longer recognizable and the im-

age is homogeneously illuminated.

• Replace the lamp adjustment reflector with

the original filter cube.

Note:

Make sure to switch off the instrument.

8. Operation

Fig. 58 Rotating specimen stage

1Object displacement (Y direction)

2Object displacement (X direction)

3Torque adjuster (Y-direction)

4Torque adjuster (X-direction)

5Focus wheel for fine focusing

8. Operation

8.1 Switching on the unit

When using a gas discharge lamp, the external

supply unit must be turned on separately (56.1).

Switch on the microscope or the CTR5000 at the

power switch.

All motorized microscope components will then

run through an initialization phase.

After the initialization is complete, the display

on the stand (Fig. 57) shows the current micro-

scope setting.

Fig. 57 Display after initialization

8.2 Stages and object displacement

Lengthening the coaxial drive

• For lengthening, pull the lower handle (58.2)

downwards. Repeat with the upper handle

(58.1).

Setting the movement rate (torque)

The torque for x and y can be individually adjust-

ed using two knurled rings (58.3, 58.4).

Fig. 56 Front view of the ebq 100 supply unit

1Power switch

2Lamp status

1 2

8. Operation

Rotating the stage

The swivel range of the rotating stages is 0° - 110°.

• Rotate the stage to loosen the locking screw

(59b.1).

• Bring the table into the desired position.

• Retighten the locking screw.

Pol rotating stage (360°)*, Pol attachable me-

chanical stage *

The specimen can be fastened using either two

spring-back stage clips or the Pol 3 multi-format

attachable mechanical stage (Fig. 59a). For

glass slides of approx. 26 mm (1") in width, the

metal plate (59a.2) needs to be pivoted outwards

and the specimen needs to be positioned ac-

cording to Fig. 59a. If commercially available

glass slides of 26 mm in width are placed per-

pendicular to that, then the range of movement

of the attachable mechanical stage, which is

normally approx. 30 mm x 40 mm, is not fully

used. The pair of lock buttons provided allow for

locking distances of 0.1, 0.3, 0.5, 1 and 2 mm.

Changing them requires forceful, axial removal.

When attaching the new lock button, make sure

that the catch pins on the inside are properly

positioned. For smaller microscopes, the limit

stop screw on the underside must be shifted

approx. 2 mm inwards toward the stroke limit.

The two verniers allow the angular measure-

ments to be read with a precision of 0.1.

45°click stop:

• Screw in the rotary knob (59a.5) until you can

feel it starting to resist.

• Then turn the specimen stage to the next click

stop.

• Loosen the rotary knob and look for the start-

ing point of the next click stop (e.g., the object

darkness setting).

• Retighten the rotary knob.

Now the rotating stage can be turned using 45°

click stop intervals.

Fig. 59a Pol rotating stage* and Pol 3 attachable mechani-

cal stage*

1Holes for the fastening screw.

2Lever for the holder for glass slides of various formats,

which can be turned inward and outward

3Storage for the centering key

4Locking button pair

545° click stop

6Clamping system for the stage rotation

8. Operation

Fig. 59b Rotating specimen stage

1Locking screw

2Fine focusing

3Coarse focusing

8.3 Focusing

There is a focus wheel on the left side of the

stand for coarse and fine focus adjustment

(Fig. 59b).

On the right side of the stand, there is also a fo-

cus wheel, which is used exclusively for fine fo-

cusing (58.4).

The special form of this handwheel makes it

possible to simultaneously grasp the coaxial

drive with your hand while operating the fine

adjustment with one finger.

8.4 Tubes

Note:

Close any unused tube openings, as otherwise

stray light can interfere with observation.

Note:

Make sure that the connecting cable is plugged

in on the MBDT25+ motorized tube (60.1).

Adjust the interpupillary distance

• Adjust the interpupillary distance of the eye-

piece tubes so that a congruent total image is

seen (Fig. 60).

Fig. 60 Tube setting

↔

Setting the personal interpupillary distance

1Motorized tube connection

1↔

8. Operation

Fig. 62 BDT25+ tube with digital camera

1Control bar

Adjusting the viewing angle

• For the AET22 and EDT22 ergo tubes, the

viewing angle can be adjusted by tilting the

binocular eyepiece in the range of 5° – 32°

(Fig. 61).

Adjusting the eyepiece extension to the arm

length

• On the AET22 tube, the eyepieces can be ex-

tended up to 30 mm (Fig. 61).

Beamsplitting in photo tubes

EDT22 tube:

The light division between the observation and

documentation ports has a definite presetting

(50:50).

Fig. 61 Individual settings of the AET22 tube

BDT25+ tube:

The light division is set manually by pulling out a

control bar.

Control Bar Observation Photo

VIS 100 % 0 %

50/50 150 % 50 %

PHOTO 110 % 100 %

MBDT25+ tube:

This tube is similar to the documentation tube

BDT25+, but it is motorized.

The control positions are selected using a vari-

able function key on the stand.

HC L 2TU tube:

The light division is set manually by pulling out a

control bar.

Control Bar Observation Photo

VIS 100 % 0 %

PHOTO 110 % 100 %

8. Operation

8.5 Eyepieces

Note:

The eyepiece’s aperture protector must be re-

moved or folded back, during microscopy while

wearing glasses.

We recommend removing bifocals and specta-

cles with progressive-addition lenses when us-

ing the microscope.

• For the adjustable tubes with documentation

output, choose the 100% VIS position.

Eyepieces with inlaid reticle

• Focus the reticle by adjusting the eyelens in

the eyepiece.

• Focus on the object through this eyepiece.

• Then, close that eye and focus on the object

by adjusting the second ocular only.

Correction for vision problems

• With your right eye, look through the right

eyepiece and bring the specimen into sharp

focus.

• Then, with your left eye, view the same posi-

tion of the specimen and rotate the left eye-

piece tube until this position is brought into

sharp focus. Do not use the focus wheel.

8.6 Objectives

The objectives are moved into the beam path

manually. Be sure that the turret locks into

place.

The positions of the objectives in the objective

turret have been specified at the factory and

must be observed when installing the objectives.

(See Installing objectives → p. 23)

When pivoting an objective inwards, the micro-

scope automatically selects:

• The optimum setting for the field diaphragm

• The optimum setting for the aperture dia-

phragm and the light intensity for each con-

trast method.

The objective magnification and the total magni-

fication appear in the display → p.39.

• Begin with a small level of magnification.

Then switch to the next higher objective.

• For immersion objectives use the appropriate

immersion medium.

OIL: use optical immersion oil only

according to DIN/ISO standards.

Cleaning → p.78.

W: Water immersion.

IMM: Universal objective for water, glycerol,

oil immersion.

Caution!

Follow the safety instructions for immersion

oil!

8. Operation

Fig. 63a Immersion objective, released Fig. 63b Immersion objective, locked

↔

For lockable immersion objectives:

• Lock these by pushing the front part upwards

until it stops (approx. 2 mm).

• Then, after a gentle turning motion to the

right, the objective is locked (Fig. 63).

For objectives with corrective mounts:

• Turn the knurled ring to adjust the objective to

the thickness of the cover glass.

Objective centering *

(DM4500 P)

Caution:

When changing the objective, the centering key

must no longer be in the corresponding open-

ings.

When centering the objectives (Fig. 64, 65), use

two hexagon wrenches to move the objectives

so that the optical axis of the objective (and,

therefore, the center of the image) is aligned

with the axis of rotation of the objective stage.

If the objectives are centered correctly, a pro-

grammed specimen position will not drift out of

the field of vision when the stage is turned.

Therefore, a specimen point located inside the

center of the cross-hairs does not change its

position when the stage is rotated a full turn.

When centering objectives, it is best to use a

detailed, high-contrast specimen.

8. Operation

Method II (Fig. 65)

• Move the marked specimen position (65a) into

the center of the M cross-hairs.

• Turn the specimen stage until the specimen

position is as far from the center of the M

cross-hairs as possible (Position A, Fig. 65b).

In extreme cases, point A (= maximum devia-

tion of the specimen position) can also be lo-

cated outside of the field of view.

• Move the image by turning the centering key

until position A of the specimen is located in

the center (= Pos. B) between pos. A and the

center of the M cross-hairs (65c).

• Move position A of the specimen to M and

check to see whether A remains in M when

the stage is rotated (65d). If necessary, repeat

the centering procedure.

The objective centering procedure needs to be

repeated for each objective. This ensures that

the objectives retain their approximate center-

ing settings when they are removed for clean-

ing, or other such procedures, and then rein-

serted into the same holes. If the coarse drive or

the height adjustment device is used to change

the height of the specimen stage (for example,

when viewing thick specimens) the centering

precision for all of the objectives may be

reduced slightly.

• Switch off the analyzer, the 1.6x tube lens and

the Bertrand lens.

• Reduce the aperture diaphragm so that it is

very small.

• Insert both objective centering keys above

the objectives that need to be centered.

• Focus the specimen.

Two resembling methods can be used for cen-

tering objectives:

Method I (Fig. 64)

• Turn the specimen stage and note the position

of the specimen that does not move in a circu-

lar path. This position of the specimen corre-

sponds to the mechanical axis of rotation of

the specimen stage.

• Now move the marked specimen position by

shifting the two centering keys to the center

of the cross-hairs.

• Turn the specimen stage and refine the cen-

tering as needed.

Fig. 65 Centering method II

Fig. 64 Centering method I

M M

abcd

8. Operation

8.7 Magnification changer

Optionally, a coded magnification changer can

be used, which is manually operated.

On the knurled ring, the following magnification

factors can be set:

B stand M stand

1x 1x

1.25x 1.5x

1.6x 2x

The selected factor is indicated in the display

and included in the total magnification.

8.8 HC P 1x/1.6x tube optics

with Bertrand lens (encoded)

These optics were developed especially for po-

larizing microscopy; however, they can also be

used for all other methods.

• If needed, switch the Bertrand lens off and

the 1x tube factor on.

For the HC P (Pol) tube optics, switching to the

1x tube factor is sufficient.

Setting the tubes and eyepieces → p. 53f.

Features:

• 1x tube factor, can be switched to 1.6x

• Bertrand lens, can be activated, encoded,

focused and centered

• Iris diaphragm in the intermediate image for

masking out small particles (15 µm for the

100x objective).

Built-in, depolarized quartz plate:

This plate prevents interference colors, which

are caused by tube prism polarization effects

(pseudopleochroism), when the analyzer is con-

nected and the polarizer is switched on; howev-

er, it only prevents this when the 1x tube factor

is being used.

When using the 1.6 fix tube factor, make sure

that the useful magnification for high objective

magnifications and apertures (objective aper-

ture x 1000) is not exceeded to the point that

overmagnification causes a blurry image im-

pression.

8. Operation

Fig. 66 Control panel

1Variable function keys

(also on the right side of the stand)

2Aperture diaphragm

3Transmitted light / incident light

4Field diaphragm

5Light intensity

12345

8.9 Light sources

• Adjust the brightness using the function keys

(66.5). The INT function buttons are always

assigned to the currently active transmitted

light (TL) or incident light (IL) axis.

• For TL and IL:

The setting can be made in coarse and fine

steps. Pressing both INT buttons at the same

time toggles between coarse and fine adjust-

ment. The light intensity in the display chang-

es accordingly.

0-20

Coarse adjustment: ======

0-255

Fine adjustment: ----------

• The intensity is individually adjusted and stored

for each objective and contrast method.

• For fluorescence:

The brightness is adjusted in 5 defined incre-

ments (FIM):

100% / 55% / 35% / 20% / 10%

8.10 Aperture diaphragm and field diaphragm

Both diaphragms have been set to suitable val-

ues for the current objective and contrast meth-

od at the factory.

• The diaphragms can be adjusted at any time

using AP (aperture diaphragm) (66.2) and FD

(field diaphragm) (66.4) function keys.

Caution!

The old values will be overwritten by the current

ones!

• The function keys are assigned to the current-

ly active transmitted light (TL) or incident light

(IL) axis.

Caution!

When the PH or DF is being used, the aperture

diaphragm is opened completely and cannot be

closed to prevent incorrect operations.

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1 Transmitted light

9.1.1 Bright field (TL)

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Select the BF (bright field) contrast method.

Do so by pressing the BF variable key.

Alternatively: press the variable button

CHANGE TL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates BF.

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

• Use the focus wheel to bring the image into

focus and set the brightness using the INT

function key.

9.1.2 Phase contrast (TL)

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Select the PH (phase contrast) contrast meth-

od.

Do so by pressing the variable button PH.

Alternatively: press the variable button

CHANGE TL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates PH.

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

Objectives that are suitable for phase con-

trast are engraved with PH.

• Bring the image into focus using the focus

wheel and set the brightness using the INT

function key.

Notes:

The microscope automatically selects the cor-

rect light ring in the condenser.

When selecting the phase contrast method, the

aperture diaphragm is opened fully and can not

be adjusted.

9. Contrast methods for Leica

DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1.3 Dark field (TL)

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Select the DF (dark field) contrast method by

pressing the variable button DF.

Alternatively: press the variable button

CHANGE TL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates DF.

The dark field ring (dark field stop) is set auto-

matically in the condenser.

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

• Bring the image into focus using the focus

wheel and set the brightness using the INT

function key.

Notes:

The maximum objective aperture that can be

used for dark field is 0.75. All objectives with

greater apertures are automatically blocked for

this method ("DF" flashes in the display).

The microscope automatically selects the cor-

rect light ring in the condenser.

When the dark field method is selected, the ap-

erture diaphragm is opened fully and cannot be

adjusted.

9.1.4 Polarization (TL)

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Select the POL (polarization) contrast method

by pressing the variable button POL.

Alternatively: press the variable button

CHANGE TL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates POL.

9.1.4.1 Manual method

• Rotate the polarizer on the underside of the

condenser into the beam path (Fig. 67a). Make

sure that the red index point on the front of

the polarizer is at 0.

• Insert the analyzer up to the stop into the left

side of the stand (Fig. 67b.1).

• Bring the polarizer and analyzer into cross po-

sition until they reach maximum darkness.

• Insert a specimen and rotate a suitable objec-

tive into place.

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1.4.2 DM4500 P - examinations

in polarized transmitted light

One polarizer only

If specimens need to be examined using other

transmitted light methods, such as bright field,

phase contrast and dark field, instead of with

polarizers, then it is usually sufficient to switch

off the analyzer or polarizer. If the brightness of

the image is not adequate, the polarizer and the

analyzer need to be switched off. Stained, bire-

fringent specimens may exhibit brightness or

color fluctuations when the specimen stage or

the polarizer is rotated (with the analyzer

switched off). This is called dichroism or pleo-

chroism, which is an important indication when

examining crystals.

However, this effect can be simulated by non-

polarizing microscopes, because they do not

contain depolarized quartz plates, or when an

incident light reflector is left in the beam path

during the transmitted light method. This also

applies to using the 1.6x tube lens in the

DM4500 P.

Crossed polarizers

According to DIN and ISO ratings the run of the

vibration directions corresponds to the table on

p. 63. However, when polarizers are crossed,

these vibrations have the same polarized optical

appearances as they do when each of the polar-

izers are interchanged by 90°.

If the specimen contains a large amount of non-

birefringent or opaque particles, then the ana-

lyzer is usually turned a few degrees away from

the cross position to make these particles

somewhat visible (for specimens that remain

dark when the polarizers are crossed precisely).

Examinations are not usually performed when

the polarizers are parallel because this configu-

ration is not sensitive enough to detect birefrin-

gent elements.

Changing the brightness when rotating birefrin-

gent objectives

When the specimen stage is rotated, the bright-

ness of birefringent (anisotropic) specimens

changes periodically. When the specimen is ro-

tated, a total of 4 extinction positions (also

called normal position) occur at each 90° inter-

val. Exactly 45° between 2 extinction positions,

4 orientations of maximum intensity occur, the

diagonal or 45° positions. In extinction, the

specimen vibration directions are parallel to the

transmission directions of the polarizers; at

maximum intensity, the specimen vibration di-

rections represent the bisectors of the polarizer

directions. The cross-hairs in the (right)

eyepiece on the polarizing microscope can be

rotated N – S/E – W; therefore, they can be

rotated in the direction of polarization or 45°, or

set up according to the specimen vibration

directions when in a diagonal position.

Fig. 67 Crossing the polarizers for observation using the

Bertrand lens, objective with high aperture, without spec-

imen

acrossed precisely

bnot crossed precisely

If pressure is present in the condenser or in the objective,

position "a" cannot be set at all

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

Simple overview observations

• Place the transmitted light specimen on the

polarizer.

• Turn the condenser head inward.

• Focus through the condenser using a low-

power magnifying lens, such as a 5x.

Although this method does not provide good im-

aging performance; it does make it possible to

view rows of specimen very quickly.

λ/4- and λ plate, quartz wedge

Depending on their design, λ/4 and λ plates are

installed on the underside of the condenser or,

for polarizing microscope, in the 8x condenser

disk (the vibration direction γ runs: ) or they

are inserted in the tube slot. An automatic,

spring-mounted dust cover flap closes the tube

slot.

For the IC/P analyzer, the λ plate can be activat-

ed by turning it so that the mark "I" is facing up-

wards.

When the plate is activated, the path difference

is increased or reduced according to Fig. 68.

The corresponding color changes can be used

to determine the vibration direction γ according

to the larger refractive index (i.e. refractive

index nγ). (The quartz wedge (69.7) allows

various color shifts on the polarizing

microscope.)

Fig. 68 Interference color with dependence on the path

difference or on the thickness and color changes in the addi-

tion and subtraction areas of the λ and λ/4 plates.

schwarz

lavendelgrau

graublau

gelblichweiß

lebhaftgelb

rotorange

tiefrot

indigo

himmelblau

grünlichblau

hellgrün

reingelb

orangerot

dunkelviolettrot

indigo

grünlichblau

meergrün

grünlichgelb

fleischfarben

kaminrot

mattpurpur

– λ

+ λ

200

400

600

800

1000

1200

1400

1600

Gangunterschied

1. Ordnung

2. Ordnung

3. Ordnung

λ

– –

λ

+ –

Circular polarization

When the specimen stage is rotated, birefrin-

gent specimens show 4 extinction positions.

When a larger number of birefringent speci-

mens are present, a few birefringent specimens

always show up randomly in the extinction posi-

tion. Circular polarization is used for simulta-

neous interference color observation of all

specimens:

• Remove the specimen from the beam path or

locate the blank position of the specimen.

• Cross the polarizers precisely. The polarizers

must be positioned exactly in the N – S/E – W

direction. This means that the analyzer must

either be set exactly at 90° or 0° of polariza-

tion.

∩

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• Insert the λ/4 plate (69.5) into the tube slot.

• Insert the λ/4 plate (69.1) into the receptacle

located on top of the polarizer and rotate it

until a specimen-free field of vision appears

at its maximum extinction position (make sure

to cross the polarizers precisely before doing

this).

Compensators for quantitative measurements

Adjustable compensators are used to obtain ex-

act measurements of path differences.

To obtain the usual specimen thickness, d, and

the measured path difference, gamma (Γ), the

birefringence ∆n’ is calculated according to the

following formula:

Γ = d x ∆n’ [nm] or ∆n = ––

When obtaining measurements, the compensator

is inserted into the compensator slot and adjust-

ed until the specimen position being measured is

at the maximum extinction position. For this, the

specimen must be pitched at a diagonal.

For HC P tube optics, use an iris diaphragm to

mask out the measuring points.

Detailed information can be found in the instruc-

tions for the compensator.

The following compensators are available:

Elliptical compensator based on Brace-Köhler

techniques 69.9)

Rotating compensator with compensator plate

and a path difference of approx. λ/10. Measure-

ments can be obtained in white or monochro-

matic light with a measurement range of up to

approx. 50 nm.

Elliptical compensator based on Sénarmont

techniques 69.6)

(λ/4 plate in subparallel position)

Measurements are obtained in monochromatic

light (546 nm), which requires an analyzer that

can be rotated 360°. In most cases, the compen-

sator is used to measure path differences of up

to 1 order. But higher path differences can be

measured. However, when doing so, the com-

pensator does not provide the entire path differ-

Fig. 69 Compensators

1, 2 λ/4 u. λplate. For polarizing microscopes only: 3 λ/4 u. λplate for the 8x turret disk, 4, 5 λ/4 u. λplate for the tube slot,

6 Revolving λ/4 plate (Sénarmont compensator), 7 Quartz wedge, 8 Tilt compensator, 9 Brace-Köhler compensator

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

ence; rather, it provides only the difference over

the entire wavelength or over a multiple of the

wavelength. Entire wavelengths must be

defined using a tilt compensator, a quartz wedge

and by measuring the interference color. The

results are more accurate than those obtained

using a tilt compensator only.

Tilt compensator B with a measurement range

of up to 5 orders based on Berek techniques

Compensator (69.8) with an MgF2 plate for mea-

suring up to approx. 5 orders of path differences

in white or monochromatic light. You can read

the path difference directly from the provided

measurement table by calculating the sum of

the two angles that are formed when the com-

pensators are tilted simultaneously.

Tilt compensator K with a measurement range of

up to 30 Orders (69.7)

For measuring path differences in white or

monochromatic light up to the specified maxi-

mum path difference. The compensator plate is

made of calcite. The evaluation is created by

performing simple calculations using the provid-

ed tables and the specified measured

constants. Measure in white or monochromatic

light.

Using conoscopy for crystal structures

Birefringent crystals create interference imag-

es, also called axis images or conoscopic imag-

es (Fig. 71a,b), in the exit pupil of the objective

(e.g. inside the objective). The form of these in-

terference images and the changes that occur

in these images when using a compensator

make it possible to state how many axes the

crystals have (uniaxial or biaxial crystals), how

the axes are oriented, and whether or not the bi-

refringence is positive or negative (positive or

negative birefringent crystals).

Because the interference images appear in the

eyepoint, they are not visible during typical

observation (orthoscopy). An improvisational

method for observing these images is to remove

the eyepiece from the tube and to use a monoc-

ular, held a few cm away, for looking into the

tube. You can improve the observation by using

a focusing telescope for the phase contrast.

However, additional crystals located in the

field of view need to be masked out because

they disrupt the interference images of a

crystal located in the middle of the field of

view.

Setting the conoscopy

For conoscopy, the specimen positions that are

most suitable are those that have the lowest

path differences (table Fig. 68).

Efficient conoscopic observation requires that

the objective be centered precisely and that the

cross position of the polarizers is exact.

• Rotate an objective with an aperture that is as

high as possible (e.g. 40x, 50x or 63x) into the

beam path.

• Rotate the condenser head into the beam

path.

• Open the aperture diaphragm.

• Place the crystal being examined as close to

the center of the field of vision as possible.

• Turn the 1.6x tube lens inward.

• Widen or narrow the iris diaphragm according

to the size of crystal, and make the field dia-

phragm narrower if necessary.

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• Insert the Bertrand lens (Fig. 70B) and focus it

by rotating the operating button until the inter-

ference image or the circular diffuse edge of

the eyepoint is in focus.

If needed, center the Bertrand lens: Insert the

hexagonal keys into the centering holes in se-

quence. If necessary, align the right eyepiec-

es so that the cross-hairs correspond approx-

imately to the direction of movement during

the centering process.

• Adjust the collector to its optimum setting;

use the diffuser if necessary.

Determining the optical character

Uniaxial crystals (Fig. 71a)

When observing uniaxial crystals in the cono-

scopic (diverging) beam path, a dark cross ap-

pears whose center point indicates the optical

axis. The cross is surrounded by colored inter-

ference bands*. When a variable compensator

(quartz wedge or tilt compensator) is used, the

rings move toward the center point or outside

two opposite quadrants in the cross. The optical

character results from the direction of the

movement of the rings according to Fig. 71.

Cross sections in which the crystal optical axis

is sloped toward the direction of the viewer are

suitable for determining the optical character. In

addition, an optical character can be deter-

mined even if the center point of the cross is lo-

cated outside of the field of view. Fig. 71 shows

that fixed compensators can be used in place of

variable compensators for determining the opti-

cal character.

Even if only one of the optical axes is within the

observer’s direction of sight, the optical charac-

ter can usually be identified. The brightness for

specimens oriented in this way changes in the

orthoscopic beam path very little or not at all

when the objective is rotated. Consequently,

only one of the two isogyres are visible in the

conoscopic beam path.

Biaxial crystals (Fig. 71b)

The cross sections in which the bisectors of the

optical axes run parallel to the direction of sight

are especially suitable for determining the opti-

cal character (the section is perpendicular to

the acute bisectrix).

A dark cross can be identified in the divergent

beam path. This cross splits into two hyperbolic

lines, also called isogyres, when the specimen

stage is turned. The cross and or hyperbolic

isogyres are surrounded by colored

interference bands. After the compensator has

been activated, the optical character can be

determined from the direction of movement of

these bands according to Fig. 71 or the following

rule: The screw axis symmetry of the isogyres

must run perpendicular to the γ−direction of the

compensator:

Fig. 70 Functions of the HC P Pol tube optics

Control element 1x Orthoscopy 1.6x Orthoscopy Conoscopy

Tube lens 1x 1.6x 1.6x

Iris diaphragm user-defined, adapted for > Specimen

as it is not the field of vision

Bertrand lens in the beam path off on

Polarization on or off on or off crossed

(not for Dichroism/

Pleochroism)

O/B

1.6x

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

Fig. 71a Determining the optical characters for uniaxial structures

Left: Positive uniaxial crystal, cut perpendicular to the optical axis.

Right: Negative uniaxial crystal, cut perpendicular to the optical axis.

1 Illustration of the vibration directions in the specimen and in the compensator

2 Interference figure changes when using a λ/4 plate,

3 Interference figure changes when using a λ/plate,

Fig. 71b Table for determining the optical character

Biaxial, positive crystals:

When the compensator is activated, the move-

ment of the interference bands proceeds from

the convex side to the concave side of the

isogyres.

Biaxial, negative crystals:

The interference bands move from the concave

side to the convex side.

Possible faults

The polarizers have been damaged (discolored)

by strong light sources or they are heavily

soiled.

The objectives or the condenser have been de-

formed by mechanical damage.

There is a beam splitter or filter between the po-

larizers.

The embedding material for transmitted light

specimens is birefringent.

γλ

–

* When using 1/4-λ glimmer plates, black points appear instead of black arcs.

Uniaxial Biaxial

Orientation

of the

condenser

plate

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1.4.3 Motorized method

• After the POL contrast method has been se-

lected, the position of the polarizer is

switched inside the condenser (if the micro-

scope is equipped with these components).

The analyzer cube is also automatically

brought into the beam path.

9.1.4.4 Combined methods

• For the Leica DM4000 B, DM4500 P and Leica

DM5000 B microscopes, it is possible to com-

bine purely mechanical and motorized compo-

nents.

For DM4500 P only:

After the Bertrand lens (links) is turned inwards,

CONOS appears on the display. The light intensi-

ty and aperture and field diaphragms are as-

signed to the objective currently in use (objec-

tive magnification for conoscopy is 40x, 63x or

100x).

9.1.5 Differential interference contrast (TL)

9.1.5.1 DM4500 P

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Insert a specimen and rotate a suitable objec-

tive into place.

• Select the DIC contrast method.

Do so by pressing the DIC variable key.

Or by pressing the variable button.

CHANGE TL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

ICT appears on the display.

• Turn the polarizer on the underside of the con-

denser into the light path. Make sure that the

red index point on the front of the polarizer is

at 0 (Fig. 72).

Fig. 72 Turn the polarizer inward

1Polarizer

Fig. 73 Inserting the analyzer

1Analyzer

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• Insert the analyzer on the left side of the stand

up to the click stop (fig. 73).

• Then insert the objective prism slider into the

slot on the objective turret.

• The DIC prism that needs to be used appears

on the display.

• For fine adjustment, rotate the knurled screw

(74.1) on the objective prism slide.

9.1.5.2 DM5000 B

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Apply a specimen and rotate a suitable objec-

tive into place.

• Select the DIC contrast method.

Do so by pressing the DIC variable key.

Alternatively: press the variable button

CHANGE TL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

ICT appears on the display.

• The polarizer located in the condenser and

the fitting condenser prisms are automatically

brought into the beam path. The correspond-

ing objective prism and the analyzer cube are

also positioned automatically.

• For fine adjustment, use the knurled wheel

above the objective turret.

Alternatively:

• Manually rotate the polarizer on the

underside of the condenser into the beam

path (Fig. 72).

• Likewise, manually insert the analyzer up to

the stop into the left side of the stand (Fig. 73).

The objective and condenser prisms are auto-

matically moved into the beam path.

Fig. 74 Motorized variants

1Knurled wheel for fine focusing

9. Contrast methods for Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• For fine adjustment, use the knurled wheel

above the objective turret.

9.2 Fluorescence

• Switch to the fluorescence axis / fluores-

cence cube (FLUO) by pushing the TL/IL func-

tion key.

• Apply a specimen and rotate a suitable objec-

tive into place.

• The current fluorescence filter cube is indi-

cated on the display.

• You may protect your specimen from fading by

closing the incident light shutter.

Do so by pressing the SHUTTER variable but-

ton.

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

This symbol appears on the display:

• Changing the fluorescence filter cube:

By pressing the variable key

Cube or Cube

• Bring the image into focus using the focus

wheel and set the brightness using the INT

function key.

• The fluorescence intensity can be increased

using the booster lens on the right side of the

stand (Fig. 75). Leica recommends that you in-

sert the booster lens into the front slot.

• For multifluorescence, use of an excitation

manager is recommended. The excitation

manager is inserted into the stand up to the

last click stop on the right side of the stand

(Fig. 76). Leica recommends that you insert

the excitation manager into the front slot.

Fig. 76 Inserting the excitation manager

Fig. 75 Inserting the booster lens

↓

10. Contrast methods for Leica DM4000 M

10.1 Incident light

10.1.1 Bright field (IL)

• Switch to the incident light axis (IL) by push-

ing the TL/IL function key.

• Select the BF (bright field) contrast method

Do so by pressing the BF variable key.

Alternatively: press the variable button

CHANGE RL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates BF.

• Insert a specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

• Bring the image into focus using the focus

wheel and set the brightness using the INT

function key.

The brightness values for each objective are

saved.

10. Contrast methods for

Leica DM4000 M

10.1.2 Dark field (IL)

• Switch to the incident light axis (IL) by push-

ing the TL/IL function key.

• Select the DF (dark field) contrast method

by pressing the variable button DF.

Alternatively: press the variable button

CHANGE RL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates DF.

The DF reflector is rotated into the beam path.

• Insert a specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

• Bring the image into focus using the focus

wheel and set the brightness using the INT

function key.

Notes:

The maximum objective aperture that can be

used for dark field is 0.75. All objectives with

greater aperture are automatically blocked for

this method ("DF" flashes in the display).

When the dark field method is selected, the ap-

erture diaphragm is opened fully and cannot be

adjusted.

10. Contrast methods for Leica DM4000 M

10.1.3 Polarization (IL)

• Switch to the incident light axis (IL) by push-

ing the TL/IL function key.

• Select the POL (polarization) contrast method

by pressing the variable button POL.

Alternatively: press the variable button

CHANGE RL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates POL.

Automatic procedure:

• The ICR filter cube is automatically brought

into the beam path.

Manual procedure:

• Manually push the corresponding polarizer

(77.3) and the IC/P analyzer (78.1) on the stand

into the beam path. Then bring the polarizer

and analyzer into cross position until they

reach maximum darkness.

• Apply a specimen and rotate an objective with

a low magnification level into place.

Fig. 78

1Insert the analyzer

Fig. 77 Objective prism slide

1Knurled wheel for fine focusing

2Prism slot with inserted prism slide bar

3Insert the polarizer

10. Contrast methods for Leica DM4000 M

10.1.4 Interference contrast (RL)

• Switch to the incident light axis (IL) by push-

ing the TL/IL function key.

• Insert a specimen and rotate a suitable objec-

tive into place.

• Select the DIC contrast method

Do so by pressing the DIC variable key.

Alternatively: press the variable button

CHANGE RL .

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates ICR.

• The ICR filter cube (containing the polarizer

and analyzer) is automatically brought into the

beam path on the incident light axis. Insert the

objective prism slide into the prism slot

(Fig. 77.2).

Alternatively:

• Manually push the ICR polarizer (77.3) and the

IC/P analyzer (78.1) on the stand into the beam

path.

• Then insert the objective prism slider into the

slot on the objective turret. (77.2).

• For fine adjustment, rotate the knurled screw

(77.1) on the objective prism slide.

10.2 Transmitted light

10.2.1 Bright field (TL)

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Select the BF (bright field) contrast method

Do so by pressing the BF TL variable key.

(For details on key assignments, please see

the identification sheet.)

The display indicates BF TL.

• Insert a transmitted light specimen.

• Rotate an appropriate objective into place.

• Bring the image into focus using the focus

wheel and set the brightness using the INT

function key.

10.2.2 Polarization (TL)

• Switch to the transmitted light axis (TL) by

pushing the TL/IL function key.

• Select the POL (polarization) contrast method.

• Push the analyzer on the left side of the stand

into the beam path (Fig. 78).

• Turn the polarizer on the underside of the con-

denser into the light path. Make sure that the

red index point on the front of the polarizer is

at 0 (Fig. 72).

11. Troubleshooting

Problem

Stand

The microscope does not respond.

Illumination

The image is completely dark.

The image is unevenly or not uniformly

illuminated.

The illumination flickers.

The lamp does not illuminate immediately upon

being switched on.

Cause/remedy

Ensure that the AC outlet has power.

Make sure that the microscope is connected

to the power supply.

Check the cable connections.

Inform Service and have the supply unit fuse

checked.

Open the shutter (→

p. 39).

Check the connection to the lamp housing on

the microscope.

Transmitted light connection:

Incident light (fluorescence) connection:

Make sure that the lamps are connected to

the power supply.

Inform Service and have the ebq 100 supply

unit fuse checked.

Remove all unneeded filters from the light

path.

Center the lamp (→

p. 47ff).

Replace the old lamp (→

p. 23ff).

Be sure that there is no loose connection at

the power supply.

Replace the old lamp (→

p. 23ff).

The ebq 100 must be switched-on repeatedly.

Hot Hg lamps should cool down before being

switching on again.

11. Troubleshooting

Problem

Bright field

The specimen can not be brought into focus.

Dark field

No definite DF contrast is possible.

The image is unevenly or not uniformly

illuminated.

Undesirable stray light.

Phase contrast

No phase contrast is possible.

Cause/remedy

Use the correct immersion medium.

Lay the specimen with the cover glass toward

the top.

Make sure that the cover glass thickness is

correct and that it meets the specifications on

the objective.

Be sure that a DF objective is being used.

The objective aperture setting is too high

(maximum 0.75). If necessary, reduce the

objective aperture using the iris diaphragm on

the objective.

Check the condenser centering.

The magnification is too weak.

Use a higher magnification.

Clean the specimen and neighboring lens sur-

faces (→

p. 77).

The specimen is too thick.

The cover glass is not placed planar.

Check the centering of the light rings

(→ p. 44).

11. Troubleshooting

Problem

Polarization

No polarization contrast is possible.

The image is insufficient.

The image is too dark.

No conoscopy image is possible.

Fluorescence

The image is completely dark (no fluorescence).

The fluorescence is too weak.

Display

The display flashes.

FAIL! appears on the display.

Cause/remedy

Bring the polarizer and analyzer into cross po-

sition until they reach maximum darkness

(without specimen).(→ p. 61ff, 72).

The embedding material for transmitted light

specimen is birefringent.

Polarizers can be damaged by strong light

sources. Check to see if the polarizer is dam-

aged (discolored) or heavily soiled.

Check to see if a beam splitter or filter is

switched on.

Objectives and condensers can be deformed

by mechanical damage.

Open the shutter (→

p. 70).

Select the incident light axis (IL) (→

p. 40).

Check the antigen-antibody combination.

Insert the booster (→

p. 33).

Center the lamp (→

p. 47ff).

Insert a new lamp (→

p. 23f).

Iotate an appropriate objective for the con-

trast method into place.

Check the installed objectives, filter cubes, etc.

Switch the microscope off and back on.

12. Care of the microscope

Caution!

Unplug the power supply before performing

cleaning and maintenance work!

Protect electrical components from moisture!

Microscopes in warm and warm-damp climatic

zones require special care in order to prevent

the build up of fungus.

The microscope should be cleaned after each

use, and the microscope optics should be kept

strictly clean.

12.1 Dust cover

Note:

To protect against dust, cover the microscope

and accessories with the dust cover after each

use.

Caution!

Let lamps cool down before covering the

stand with a dust cover. The dust cover is

not heat-resistant. In addition condensation

water may occur.

12.2 Cleaning

Caution:

Residual fiber and dust can create unwanted

background fluorescence.

Cleaning coated parts

Dust and loose dirt particles can be removed

with a soft brush or lint-free cotton cloth.

Stubborn dirt can be removed with all commonly

available aqueous solutions, naphtha or alcohol.

For cleaning coated parts, use a linen or leather

cloth that is moistened with one of these sub-

stances.

Caution:

Thinners containing acetone, xylene or ni-

trogen can harm the microscope and thus

must not be used.

Test cleaning solutions of unknown composition

first on a less visible area of the unit. Be sure

that coated or plastic surfaces do not become

matted or etched.

Cleaning the stage

Rub the stage with paraffin oil or acid-free Vase-

line to remove light spots on the stage.

12. Care of the microscope

Cleaning glass surfaces

Remove dust on glass surfaces with a fine, dry

and grease-free brush made from hair, by blow-

ing with a squeeze blower or vacuum suction.

Remove stubborn dirt on glass surfaces with a

clean cloth dampened with distilled water. If the

dirt still can not be removed, use pure alcohol,

chloroform or petroleum ether.

Cleaning objectives

Caution!

The objective may not be unscrewed during

cleaning. If damage appears on inner sur-

faces, the objectives must be sent to your

Leica subsidiary for repair. We also advise

against cleaning the inside surfaces of the

eyepieces.

The front lenses of objectives are cleaned as

described under "Cleaning Glass Surfaces". The

upper lens is cleaned by being blown off with a

pneumatic pump.

Removing immersion oil

Caution!

Follow safety instructions for immersion oil!

First, wipe off the immersion oil with a clean cot-

ton cloth, and then re-wipe the surface several

times with ethyl alcohol.

12.3 Handling acids and bases

For examinations using acids or other aggres-

sive chemicals, particular caution must be tak-

en.

Caution:

Be absolutely certain to prevent the optics

and mechanical parts from coming into con-

tact with these chemicals.

13. Essential wear and spare parts

Order No.

Material No. Name Used for

Replacement lamps

11 500 974 Halogen bulb 12 V 100 W 107/2 lamp housing

11 500 137 High-pressure mercury burner 50W 106 z lamp housing

11 500 138 High-pressure mercury burner 100W 106 z lamp housing

11 500 321 High-pressure mercury burner 100W 106 z lamp housing

(103 W/2)

11 500 139 High-pressure xenon burner 75 W 106 z lamp housing

Screw cap for unused objective receptacles

020-422.570-000 Screw cap M 25 Objective turret

Replacement eyecup (antiglare protection) for HC PLAN eyepiece

021-500.017-005 HC PLAN eyecup 10x/25 eyepiece

021-264.520-018 HC PLAN eyecup 10x/22 eyepiece

021-264.520-018 HC PLAN eyecup 10x/20 eyepiece

Immersion oil

11 513 860 120 ml OIL and IMM objectives

11 513 861 250 ml and oil condenser heads

11 513 859 10 ml, without self-fluorescence

13. Essential wear and spare parts

14. Abbreviations and pictograms

Contrast method

Magnification

Light intensity / diaphragms

Light division in the motorized tube

Transmitted light shutter is open

Transmitted light shutter is closed

Incident light shutter is open

Incident light shutter is closed

14. Abbreviations and pictograms

↓

↑

AET Advanced ergo tube

AP Aperture diaphragm

BF Bright field

COMBI Combination methods

CONOS Conoscopy

CUBE Fluorescence cube

DF Dark field incident / transmitted light

DIC Differential interference contrast

FD Field diaphragm

FLUO Fluorescence axis (incident light)

ICR Interference contrast (incident light)

ICT Interference contrast (transmitted light)

IL Incident light

INT Intensity

MBDT Motorized basic documentation tube

PH Phase contrast

POL Polarization, incident / transmitted light

RL Incident light

TL Transmitted light



15. Index

Adjusting the light sources 45

Allowable ambient conditions 18

Ambient conditions 18

Ambient temperature 10

Analyzer 32, 61, 69, 72

Analyzer cube 68, 69

Aperture diaphragm 15, 39, 59

Beam splitting in photo tubes 54

Bertrand lens 58, 68

Booster lens 70

Bright field 60, 71

Checking the phase contrast

rings 44

Circular polarization 63

Cleaning 77

Cleaning objectives 78

Coaxial drive 51

Compensators 64

Condenser 13, 15, 21

Condenser centering 41

Condenser connection 21

Condenser height adjuster 19, 21

Condenser holder 21

Conoscopy 65

Conoscopy module 13, 38

Contrast method 12, 60, 71

Correction for vision problems 55

Dark field 61, 71

Dark field stop 61

Defined function key 40

DIC prisms 32

Differential interference contrast 68

Display 15, 39

Disposal 11

ebq 100 supply unit 10, 29, 51

Electrical safety 10

ErgoModule 33

Excitation manager 33, 70

Eyepiece 15

Field diaphragm 15, 39, 59

Filter block changer 16

Filter cube 30

Filter cube ICR 72, 73

FIM (fluorescence intensity

manager) 12, 59

Fluorescence 70

Fluorescence intensity 70

Focus finder 37

Focusing 41, 53

Focusing telescope 44

Function buttons 35, 40

Gas discharge lamps 27, 28

Halogen lamp 26, 47

HC P tube optics 58, 66

Hg 100 W and Xe 75 W

mercury lamps 49

Hg 50 burner 28

Hg 50 W mercury lamp 48

Identification sheet

23, 30, 60, 61, 69, 70, 71, 72, 73

Illumination manager 12

Immersion oil 55, 78

Incident light axis 12

Incident light polarizers 31

Incident light shutter 39

Incident light turret disk 30

Initialization 38

Interference contrast 73

Intermediate systems 19

Köhler illumination 21, 41

λ/4 and λ plate 63

Lamp housing 16

Lamp housing 106 z 25, 46

Lamp housing 107/2 23, 45

Lamp housing

receptacle 24, 26, 29

LAS software package 13, 17

Leica CTR5000 electronics

box 10, 34

Leica SmartTouch 13

Light intensity 39

Light sources 45, 59

Light sources for the incident

light axis 25

Light sources for the transmitted light

axis 23

Locking pin 30

Magnification changer 13, 58

Mirror housing 33

Motorized analyzer 32

Motorized polarizer 31

Objective aperture 61

Objective centering 56

Objective prism slide 73

Objective turret 12, 15

Objectives 55

Operating buttons 15

Optical character 66

Phase contrast 44, 60

Pol attachable mechanical

stage 52

Polarization 61, 72

Polarizer 61, 62, 69, 72

Polarizer L/ICR 31

Polarizer R/ICR 31

Polarizer R/P 31

Power supply connection 34

Prism slot 73

Quartz plate 58

Quartz wedge 63

Reflector cube 30

Reflector cube for lamp

adjustment 45

Reset function 35

Rotating polarizer 31

Rotating stage 20, 52

Shutter 70

Specimen holder 19

Specimen stage 19

Transmitted light / incident

light toggle 15

Transmitted light and incident

light analyzer 32

Transmitted light axis 12

Transmitted light filter 16

Transmitted light polarizer ICT/P 31

Transmitted light shutter 39

Variable function

buttons 15, 16, 35, 40

Xe 75 burner 28

16. EU Declaration of Conformity

Download:

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_DM4000b

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_DM4000m

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_DM4500p

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_DM5000b

Leica DM4000 B

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

Leica DM5000 B

Bedienungsanleitung

Copyrights

Alle Rechte an dieser Dokumentation liegen bei

der Leica Microsystems CMS GmbH. Eine Ver-

vielfältigung von Text und Abbildungen – auch

von Teilen daraus – durch Druck, Fotokopie, Mi-

krofilm oder andere Verfahren, inklusive elektro-

nischer Systeme, ist nur mit ausdrücklicher

schriftlicher Genehmigung der Leica Micro-

systems CMS GmbH gestattet.

Der Begriff Windows kann im folgenden Text

ohne weitere Kennzeichnung verwendet wer-

den. Hierbei handelt es sich um ein geschütztes

Warenzeichen der Firma Microsoft Corporation.

Ansonsten kann aus der Verwendung von

Warennamen ohne besondere Hinweise kein

Rückschluss auf deren freie Verwendbarkeit ge-

zogen werden.

Die in der folgenden Dokumentation enthaltenen

Hinweise stellen den derzeit aktuellen Stand der

Technik sowie den derzeit aktuellen Wissens-

stand dar. Die Zusammenstellung von Texten

und Abbildungen haben wir mit größter Sorgfalt

durchgeführt. Trotzdem kann für die Richtigkeit

des Inhaltes dieses Handbuches keine Haftung

irgendwelcher Art übernommen werden. Wir

sind jedoch für Hinweise auf eventuell vorhande-

ne Fehler jederzeit dankbar.

Die in diesem Handbuch enthaltenen Informa-

tionen können ohne vorherige Ankündigung ge-

ändert werden.

Inhalt

7. Inbetriebnahme ......................................... 35

7.1 Funktionsprinzip ......................................... 35

7.2 Einschalten ................................................. 38

7.3 Das Display

(DM4000 B/4000 M/4500 P) ...................... 39

7.4 Die Funktionstasten .................................. 40

7.5 Köhlersche Beleuchtung ......................... 41

7.5.1 Durchlicht......................................... 41

7.5.2 Auflicht ............................................. 42

7.6 Phasenkontrastringe überprüfen ........... 44

7.7 Einstellung des motorischen

Polarisators (DM4500 P/DM5000 B)....... 45

7.8 Justieren der Lichtquellen....................... 45

8. Bedienung .................................................. 51

8.1 Einschalten ................................................. 51

8.2 Tische und Objektverschiebung ............. 51

8.3 Fokussierung .............................................. 53

8.4 Tuben ........................................................... 53

8.5 Okulare ........................................................ 55

8.6 Objektive ..................................................... 55

8.7 Vergrößerungswechsler .......................... 58

8.8 Tubusoptik HC P 1x/1.6x ........................... 58

8.9 Lichtquellen ................................................ 59

8.10 Aperturblende und

Leuchtfeldblende....................................... 59

Inhalt

1. Wichtige Hinweise zur Anleitung ......... 7

2. Zweckbestimmung der Mikroskope ..... 8

3. Sicherheitshinweise ................................ 9

3.1 Allgemeine Sicherheitshinweise ........... 9

3.2 Elektrische Sicherheit .............................. 10

3.3 Entsorgung .................................................. 11

4. Geräteübersicht ........................................ 12

5. Auspacken.................................................. 17

6. Montage des Mikroskops ....................... 19

6.1 Objekttisch .................................................. 19

6.2 Kondensor ................................................... 21

6.3 Tubus und Okulare..................................... 22

6.4 Objektive ..................................................... 23

6.5 Lichtquellen für die Durchlichtachse .... 23

6.6 Lichtquellen für die Auflichtachse ......... 25

6.7 Bestückung der

Auflicht-Revolverscheibe ........................ 30

6.8 Polarisator und Analysator...................... 31

6.9 DIC-Prismen ............................................... 32

6.10 Optionales Zubehör................................... 33

6.11 Anschluss an die Stromversorgung ...... 34

6.12 Anschluss

an die Elektronikbox CTR5000 ................. 34

Inhalt

9. Kontrastverfahren für

Leica DM4000 B/DM4500 B/

DM4500 P/DM5000 B ................................ 60

9.1 Durchlicht ................................................... 60

9.1.1 Hellfeld ............................................... 60

9.1.2 Phasenkontrast................................. 60

9.1.3 Dunkelfeld.......................................... 61

9.1.4 Polarisation ....................................... 61

9.1.4.1 Manuelles Verfahren ................... 61

9.1.4.2 DM4500 P – Untersuchungen

im polarisierten Durchlicht ......... 62

9.1.4.3 Motorisches Verfahren ............... 68

9.1.4.4 Kombinierte Verfahren ................ 68

9.1.5 Differentieller

Interferenzkontrast ........................ 68

9.1.5.1 DM4500 B/DM4500 P .................... 68

9.1.5.2 DM5000 B........................................ 69

9.2 Fluoreszenz ................................................. 70

10. Kontrastverfahren für

Leica DM4000 M ........................................ 71

10.1 Auflicht ........................................................ 71

10.1.1 Hellfeld ............................................. 71

10.1.2 Dunkelfeld........................................ 71

10.1.3 Polarisation ..................................... 72

10.1.4 Interferenzkontrast ........................ 73

10.2 Durchlicht ..................................................... 73

10.2.1 Hellfeld ............................................. 73

10.2.2 Polarisation ..................................... 73

11. Trouble Shooting ....................................... 74

12. Pflege des Mikroskops............................ 77

12.1 Staubschutz ................................................ 77

12.2 Reinigung .................................................... 77

12.3 Umgang mit Säuren und Basen .............. 78

13. Wichtigste Verschleiß- und

Ersatzteile ................................................... 79

14. Abkürzungen und Piktogramme............. 80

15. Index ............................................................ 81

16. EU-Konformitätserklärung ...................... 82

1. Wichtige Hinweise zur Anleitung

(1.2)

→ S.20

Ziffern in Klammern, z.B. (1.2), beziehen sich auf

Abbildungen, im Beispiel Abb.1, Pos. 2.

Ziffern mit Hinweispfeil, z.B. → S.20, weisen auf

eine bestimmte Seite dieser Anleitung hin.

Achtung!

Besondere Sicherheitshinweise in dieser

Anleitung sind durch das nebenstehende

Dreieckssymbol gekennzeichnet und grau

unterlegt.

Achtung! Bei einer Fehlbedienung können Mi-

kroskop bzw. Zubehörteile beschädigt werden.

Erklärender Hinweis.

Hinweise zur Entsorgung von Mikroskop,

Zubehörkomponenten und Verbrauch-

material.

Nicht in allen Ausrüstungen enthaltene Position.

Textsymbole, Piktogramme und ihre Bedeutung:

Achtung!

Diese Bedienungsanleitung ist ein wesentli-

cher Bestandteil des Mikroskops und muss

vor Inbetriebnahme und Montage sorgfältig

gelesen werden.

1. Wichtige Hinweise zur Anleitung

Diese Bedienungsanleitung enthält wichtige An-

weisungen und Informationen für die Betriebs-

sicherheit und Instandhaltung des Mikroskops

und der Zubehörteile. Sie muss daher sorgfältig

aufbewahrt werden.

2. Zweckbestimmung der Mikroskope

Die Mikroskope DM4000 – DM5000, zu denen

diese Bedienungsanleitung gehört, und die den

Kennbuchstaben B tragen, sind für biologische

Routine- und Forschungsanwendungen vorge-

sehen. Dies schließt die Untersuchung von aus

dem menschlichen Körper stammenden Proben

zum Zwecke der Informationsgewinnung über

physiologische oder pathologische Zustände

oder angeborene Anomalien oder zur Prüfung

auf Unbedenklichkeit und Verträglichkeit bei po-

tenziellen Empfängern oder zur Überwachung

therapeutischer Maßnahmen ein.

Die Mikroskope, die den Kennbuchstaben M

oder P tragen, sind für materialwissen-

schaftliche, geologische oder mineralogische

Untersuchungen vorgesehen.

Alle oben genannten Mikroskope entsprechen

der EG-Richtlinie 98/79/EG über In-vitro-

Diagnostika. Gleichzeitig erfüllen die Geräte die

EG-Richtlinien 73/23/EWG betreffend elektrische

Betriebsmittel und 89/336/EWG über die elektro-

magnetische Verträglichkeit für den Einsatz in

industrieller Umgebung.

Achtung!

Für jegliche nicht-bestimmungsgemäße Ver-

wendung und bei Verwendung außerhalb

der Spezifikationen von Leica Microsystems

CMS GmbH, sowie gegebenenfalls daraus

entstehender Risiken übernimmt der Her-

steller keine Haftung.

In solchen Fällen verliert die Konformitätser-

klärung ihre Gültigkeit.

Achtung!

Diese (IVD-) Geräte sind nicht zur Verwen-

dung in der nach DIN VDE 0100-710 definier-

ten Patientenumgebung vorgesehen. Sie

sind auch nicht zur Kombination mit

Medizingeräten nach der EN 60601-1 vorge-

sehen. Wird ein Mikroskop mit einem

Medizingerät nach EN 60601-1 elektrisch lei-

tend verbunden, so gelten die Anforderun-

gen nach EN 60601-1-1.

3. Sicherheitshinweise

3.1 Allgemeine Sicherheitshinweise

Dieses Gerät der Schutzklasse 1 ist gemäß

EN 61010-2-101:2002,

EN 61010-1:2001,

IEC 1010-1:2001,

Sicherheitsbestimmungen für elektrische

Mess-, Steuer-, Regel- und Laborgeräte gebaut

und geprüft.

Achtung!

Um diesen Auslieferungszustand zu erhalten

und einen gefahrlosen Betrieb sicherzustellen,

muss der Anwender die Hinweise und Warn-

vermerke beachten, die in dieser Bedie-

nungsanleitung enthalten sind.

Achtung!

Die in der Bedienungsanleitung beschriebe-

nen Geräte bzw. Zubehörkomponenten sind

hinsichtlich Sicherheit oder möglicher Ge-

fahren überprüft worden.

Bei jedem Eingriff in das Gerät, bei Modifi-

kationen oder der Kombination mit

Nicht-Leica-Komponenten, die über den

Umfang dieser Anleitung hinausgehen, muss

die zuständige Leica-Vertretung oder das

Stammwerk in Wetzlar konsultiert werden!

Bei einem nicht autorisierten Eingriff in das

Gerät oder bei nicht bestimmungsgemäßem

Gebrauch erlischt jeglicher Gewährleistungs-

anspruch, sowie die Produkthaftung!

3. Sicherheitshinweise

Achtung!

Der Netzstecker darf nur in eine Steckdose

mit Schutzkontakt eingeführt werden.

Die Schutzwirkung darf nicht durch eine

Verlängerungsleitung ohne Schutzleiter auf-

gehoben werden. Jegliche Unterbrechung

des Schutzleiters innerhalb oder außerhalb

des Gerätes oder Lösen des Schutzleiteran-

schlusses kann dazu führen, dass das Gerät

gefahrbringend wird. Absichtliche Unterbre-

chung ist nicht zulässig!

Achtung!

Durch Anschluss an die Erdung können an

das Mikroskop angeschlossene Zusatz-

geräte mit eigener und/oder extra Netz-

versorgung auf gleiches Schutzleiter-poten-

zial gebracht werden. Bei Netzen ohne

Schutzleiter ist der Leica-Service zu fragen.

90-250 V~

50-60 Hz

max. 155 VA

2xT2A (IEC 127)

10-36°C

max. 80% bis 30°C

90-250 V~

50-60 Hz

max. 290 VA

T6,3 A

(IEC 60127-2/3)

15-35°C

max. 80% bis 30°C

3.2 Elektrische Sicherheit

Allgemeine technische Daten

Elektronikbox Leica CTR5000 (für DM5000 B)

Verwendung nur in Innenräumen.

Versorgungsspannung:

Frequenz:

Leistungsaufnahme:

Sicherungen:

Umgebungstemperatur:

Relative Luftfeuchtigkeit:

Überspannungskategorie:

Verschmutzungsgrad:

Mikroskop

Verwendung nur in Innenräumen.

Versorgungsspannung:

Frequenz:

Leistungsaufnahme:

DM4000

DM4500

DM5000

Sicherungen:

DM4000

DM4500

DM5000

Umgebungstemperatur:

Relative Luftfeuchtigkeit:

Überspannungskategorie:

Verschmutzungsgrad:

Vorschaltgerät ebq 100*

Verwendung nur in Innenräumen.

Versorgungsspannung:

Frequenz:

Leistungsaufnahme:

Sicherungen:

Umgebungstemperatur:

Relative Luftfeuchtigkeit:

Überspannungskategorie:

Verschmutzungsgrad:

(Siehe beiliegende Anleitung)

90-250 V~

50-60 Hz

max. 180 VA

max. 290 VA

T6,3 A (IEC 60127-2/3)

Siehe CTR5000

15-35°C

max. 80% bis 30°C

3. Sicherheitshinweise

Achtung!

Es ist sicherzustellen, dass nur Sicherungen

vom angegebenen Typ und der angegebe-

nen Nennstromstärke als Ersatz verwendet

werden. Die Überbrückung des Sicherungs-

halters ist unzulässig.

Achtung!

Die elektrischen Zubehörkomponenten des

Mikroskops sind nicht gegen Wassereintritt

geschützt. Wassereintritt kann zu einem

Stromschlag führen.

Achtung!

Schützen Sie das Mikroskop vor zu hohen

Temperaturschwankungen. Es kann zur

Kondensatbildung und Beschädigung

elektrischer und optischer Komponenten

kommen.

Betriebstemperatur: 15-35°C.

Achtung!

Schalten Sie vor dem Austausch der Siche-

rungen oder der Lampen unbedingt den

Netzschalter aus und entfernen Sie das

Netzkabel.

3.3 Entsorgung

Nach dem Ende der Produktlebenszeit kontak-

tieren Sie bitte bezüglich der Entsorgung den

Leica Service oder den Leica Vertrieb.

Beachten Sie bitte die nationalen Gesetze und

Verordnungen, die z.B. die EU-Richtlinie WEEE

umsetzen und deren Einhaltung sicherstellen.

Hinweis!

Wie alle elektronischen Geräte dürfen das

Mikroskop, seine Zubehörkomponenten und

das Verbrauchsmaterial nicht im allgemei-

nen Hausmüll entsorgt werden!

4. Geräteübersicht

Spezifikation

Kontrastverfahren

Durchlichtachse

Auflichtachse

Z-Trieb

Objektivrevolver

Leica DM4000 B

Leica DM5000 B

• Durchlicht:

DM4000 B: BF, DF, PH, Pol

DM5000 B: auch ICT (mot.)

• Auflicht: Fluo

• im Stativ integriert

• mot. 5-fach Filterrevolver-

scheibe

(DM5000 B 8-fach optional)

• mit FIM (Fluoreszenz Intensi-

tätsmanager) zur Reduktion

der Lichtintensität in 5 Stufen

• mechanische Booster-Linse

zur Verstärkung der Fluores-

zenzintensität

• motorischer Shutter

• manuell, absolut codiert

• DM4000 B: 6-fach/7-fach mit

M25-Gewinde

DM5000 B: 7-fach (M25)

DM5000 B: Mit Objektiv-Pris-

men-Scheibe (3 Positionen)

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

• Durchlicht:

DM4000 M: BF, DF, PH, ICT,

Pol

DM4500 P: BF, DF, PH, ICT,

Pol (Konoskopie)

• Auflicht:

BF, DF, ICR, Pol, Fluo

• im Stativ integriert

• mot. 4-fach Filterrevolver-

scheibe

• automatischer

Beleuchtungsmanager

• DM4000 M: motorischer

Shutter

• manuell, absolut codiert

• DM4000 M: 6-fach mit M32-

Gewinde

DM4500 P: 6-fach mit M25-

Gewinde, zentrierbar, codiert

• Aufnahme für DIC Prismen

und Pol Kompensatoren

(für DM4000 M: optional)

• automatischer Beleuchtungsmanager

(mot.. Apertur- und Feldblende, mot. Intensitätsregelung)

• automatische farbneutrale Helligkeitsregelung

• motorischer Shutter

• manuell

4. Geräteübersicht

Spezifikation

XY Tisch

Tubus

Kondensor

Vergrößerungswechsler

(optional)

Bedienelemente

Computer Interface

Software tools

Leica DM4000 B

Leica DM5000 B

• manuell

• Tisch wechselbar

• Länge Koaxialtrieb: 155 mm

• manuell

• 3-fach absolut codiert

• 1x; 1,25x; 1,6x

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

• manuell

• DM4000 M:

• Tisch wechselbar

• Länge Koaxialtrieb: 140 mm

DM4500 P:

• Pol-Tisch wechselbar

• manuell

• 3-fach absolut codiert

• 1x; 1,5x; 2x

• Kondensorkopf motorisiert

• Kondensorscheibe für Lichtringe, DF-Stop, DIC-Prismen

• automatische Köhlersche Beleuchtung

• optional Polarisator integriert und motorisiert

• Bedientasten am Stativ für alle motorisierten

Mikroskop-Funktionen

• zusätzlich variable Funktionstasten

• Handräder zum Fokussieren

• LC-Display

• DM5000 B mit Leica SmartTouch

• USB2.0

• Leica Application Suite (LAS)

für WindowsTM 2000, XP, Vista

• mit Plug-ins für:

• Mikroskop- und Kamera-Konfiguration

• Mikroskop- und Kamera-Steuerung

• Image-Acquisition

• manuell oder motorisiert (DM4500P: manuell)

• optional mit ein oder zwei Kameraausgängen

• DM4500 P: Konoskopie-Modul

(Tubusoptik HC P1x/1.6x mit Bertrandlinse, kodiert)

4. Geräteübersicht

Leica DM4000 B

Leica DM5000 B

Nur für Leica DM5000 B:

separate Bedieneinheit mit

Spannungsversorgung für 100W

Halogenlampe. Siehe → S.10

(elektrische Sicherheit)

Leica DM4000 M

Leica DM4500 P

Spezifikation

Elektronik-Box

Leica CTR5000

4. Geräteübersicht

1Okular

2Okularstutzen

3Tubus

4Objektivrevolver mit Objektiven

5Präparatetisch mit Präparatehalter

6Kondensor

7LC-Display

891011

8Bedientasten Leuchtfeldblende

9Umschaltung Durchlicht/Auflicht

10 Bedientasten Aperturblende

11 Bedientasten für Helligkeitseinstellung

12 Fokushandrad mit Grob- und Feintrieb

13 Variable Funktionstasten (werkseitig vorbelegt)

14 Lampen-Justierfenster

Abb. 1 Linke Stativseite mit Advanced Ergotubus AET22

4. Geräteübersicht

15 Lampenhaus für Auflicht

16 Lampenhaus für Durchlicht

17 Durchlichtfilter, optional

18 Durchlichtfilter, optional

19 Variable Funktionstasten (werkseitig vorbelegt)

20 x/y-Koaxialtrieb, höhenverstellbar

21 Handrad für Feinfokus

22 Motorisierter Filterblockwechsler

21 20 19 18 17

Abb. 2 Rechte Stativseite mit Advanced Ergotubus AET22

5. Auspacken

Die Lieferung erfolgt in zwei Packstücken.

Der Stativkarton enthält die folgenden Kompo-

nenten:

• Stativ mit integrierter Auflichtachse und

Objektivrevolver

• Präparatetisch mit Tischwinkel

• Netzkabel und PC-Verbindungskabel

• CD mit dem Softwarepaket Leica Application

Suite (LAS)

• Anleitungen und Liste der Mikroskopvorein-

stellung

Der Systemkarton enthält das mikroskopische

Zubehör:

• Tubus

• Okulare

• Objektive

• Kondensor

• Lampenhäuser mit Zubehör

• Montagewerkzeug

• je nach Ausrüstung weiteres mikroskopisches

Zubehör wie Filterwürfel, etc.

Das externe Vorschaltgerät* ebq 100 wird in ei-

ner gesonderten Verpackung geliefert.

Für das Mikroskop Leica DM5000 B:

Die Elektronikbox Leica CTR5000 wird in einer

gesonderten Verpackung geliefert.

Entnehmen Sie zunächst vorsichtig alle Kompo-

nenten dem Transport- und Verpackungsmaterial.

Hinweis:

Das Berühren der Linsenoberfläche der Objekti-

ve ist möglichst zu vermeiden. Entstehen den-

noch Fingerabdrücke auf den Glasflächen, so

sind diese mit einem weichen Leder- oder

Leinenlappen zu entfernen. Schon geringe Spu-

ren von Fingerschweiß können die Oberflächen

optischer Geräte in kurzer Zeit angreifen. Weite-

re Hinweise im Kapitel “Pflege des Mikroskops”

→

S. 77.

Achtung!

Mikroskop und Peripheriegeräte auf kei-

nen Fall bereits jetzt an die Steckdose an-

schließen!

5. Auspacken

Aufstellungsort

Das Arbeiten mit dem Mikroskop sollte in einem

staubfreien Raum erfolgen, der frei von Öl- und

anderen chemischen Dämpfen und extremer

Luftfeuchtigkeit ist. Am Arbeitsplatz sollen

außerdem große Temperaturschwankungen,

direkt einfallendes Sonnenlicht und Erschütte-

rungen vermieden werden. Hierdurch können

Messungen bzw. mikrografische Aufnahmen ge-

stört werden.

Zulässige Umgebungsbedingungen:

Temperatur 15–35°C

Relative Luftfeuchtigkeit max. 80% bis 30°C

Mikroskope in warmen und feucht-warmen

Klimazonen brauchen besondere Pflege, um ei-

ner Fungusbildung vorzubeugen.

Weitere Hinweise in den Kapiteln „Pflege des

Mikroskops“ →

S. 77.

Achtung!

Elektrische Komponenten müssen mindestens

10 cm von der Wand und von brennbaren

Gegenständen entfernt aufgestellt werden.

Transport

Für den Versand oder Transport des Mikroskops

und seiner Zubehörkomponenten sollte die

Originalverpackung verwendet werden.

Um Beschädigungen durch Erschütterungen zu

vermeiden, sollten vorsorglich folgende Kom-

ponenten demontiert und gesondert verpackt

werden:

• Schrauben Sie die Objektive heraus.

• Entfernen Sie den Kondensor.

• Entfernen Sie den Objekttisch.

• Nehmen Sie die Lampenhäuser ab.

• Demontieren Sie den Brenner im Lampenhaus

106 z.

• Entfernen Sie alle beweglichen bzw. losen Teile.

6. Montage

6. Montage des Mikroskops

Die Mikroskopkomponenten werden sinnvoller-

weise in dieser Reihenfolge montiert:

• Objekttisch

• Kondensor mit Kondensorkopf

• Tubus

• Okulare

• Objektive

• Lampenhäuser mit Lichtquellen

• Bestückung der Auflicht-Revolverscheibe*

Für die Montage sind nur wenige, universell

verwendbare Schraubendreher und Schlüssel

notwendig, die im Lieferumfang enthalten sind.

Bei Verwendung von Zwischensystemen und

optischem Zubehör kann die Reihenfolge ab-

weichen.

Lesen Sie dazu das Kapitel

„6.10 Optionales Zubehör“ →

S. 33.

6.1 Objekttisch

Achtung:

Vor dem Montieren des Objekttisches dürfen

noch keine Objektive eingeschraubt sein!

• Setzen Sie den Präparatehalter auf den Tisch

auf und befestigen Sie ihn mit den beiden

Schrauben (3.1).

• Drehen Sie den Kondensorhalter mittels der

Kondensorhöhenverstellung (3.2) ganz nach

oben, das heißt möglichst nahe an den Tisch.

• Lockern Sie die Tischklemmung (3.3) leicht.

Abb. 3 Mechanischer Objekttisch

1Fixierschrauben für Präparatehalter

2Kondensorhöhenverstellung

3Tischklemmung

6. Montage

•Nur für DM4500 P:

Pol-Objektführer*

Objektführer so verstellen, dass die Befes-

tigungsschraube unterhalb der Bohrung (4a.1)

sichtbar wird. Objektführer in die Führungs-

bohrungen des Drehtisches einsetzen und

Befestigungsschraube mittels Sechskant-

schraubendreher anziehen.

Ansetzbarer Objektführer*

Der Objektführer kann links, rechts oder fron-

tal angesetzt werden (ohne Abb.); die Befesti-

gung erfolgt mittels der beiden Klemm-

schrauben.

• Setzen Sie den Tisch von oben an die

Schwalbenschwanzführung (4.2) an und

schieben Sie den Tisch soweit nach unten, bis

das obere Ende der Schwalbenschwanz-

führung bündig mit dem oberen Ende der

Tischklemmung abschließt.

• Ziehen Sie die Tischklemmung (4.1) fest an.

Hinweis:

Bei dickeren Präparaten (Leica DM4000 M) kann

der Tisch entsprechend niedriger angesetzt

werden.

Abb. 4 Ansetzen des Tisches

1Tischklemmung

2Schwalbenschwanzführung

Abb. 4a Pol-Drehtisch* und Objektführer Pol 3*

1Bohrung für Befestigungsschraube

2Ein-/ausschwenkbarer Hebel für die Halterung

von Objektträgern unterschiedlicher Formate

3Aufbewahrung für Zentrierschlüssel

4Rastknopfpaare

545°-Rastung

6Klemmung Tischdrehung

6. Montage

6.2 Kondensor

• Schrauben Sie den Kondensorkopf in den

Kondensor ein.

• Drehen Sie den Kondensorhalter (5.1) mittels

der Kondensorhöhenverstellung (5.4) ganz

nach unten.

• Drehen Sie die Klemmschraube für den Kon-

densor (5.3) soweit heraus, dass der Konden-

sor von vorne eingesetzt werden kann.

• Schieben Sie den Kondensor von vorne bis

zum Anschlag in den Kondensorhalter ein. Auf

der Unterseite des Kondensors befindet sich

ein Orientierungsstift (6.1), der in die Füh-

rungsnut (7.1) einrasten muss.

• Ziehen Sie die Klemmschraube (5.3) für den

Kondensor an, so dass der Kondensor arre-

tiert wird.

• Verbinden Sie den Kondensor über den An-

schluss (8.1) mit dem Stativ.

Abb. 5 Kondensorhalter

1Kondensorhalter

2Kondensorzentrierung

3Klemmschraube für Kondensor

4Kondensorhöhenverstellung

Abb. 6

Kondensorunterseite

1Orientierungsstift

Abb. 7 Kondensorhalter

1Führungsnut

23 4

Abb. 8 Anschluss des Kondensors

1Buchse für Kondensorkabel

Hinweis:

Vor dem Mikroskopieren muss der Kondensor

zentriert werden.

→

Köhlersche Beleuchtung S. 41.

6. Montage

6.3 Tubus und Okulare

Der Tubus wird direkt oder über Zwischen-

module am Stativ montiert. Die Befestigung er-

folgt durch die seitliche Klemmschraube (9b.1).

•Nur für den motorischen Tubus MBDT:

Entfernen Sie die Transportsicherung (9a.1)

an der Unterseite des Tubus.

• Drehen Sie die Klemmschraube (9b.1) etwas

heraus.

• Setzen Sie den Tubus in die kreisförmige Auf-

nahme (Ringschwalbe) ein.

• Ziehen Sie die Klemmschraube (9b.1) wieder

fest.

•Nur für den motorischen Tubus MBDT:

Verbinden Sie den Tubus mit der Anschluss-

buchse (10.1) am Stativ.

Abb. 9b Befestigen des Tubus

1Klemmschraube

Abb. 10 Anschluss motorischer Tubus

1Anschlussbuchse

Abb. 9a Unterseite des Tubus

1Transportsicherung

• Die Okulare werden in die Okularstutzen am

Tubus eingesetzt.

•Nur für den Tubus BDTP:

Die Pol-Okulare werden in die Okularstutzen

(mit Rastnut) am Tubus eingesetzt.

6. Montage

6.4 Objektive

Die Aufnahmen am Objektivrevolver sind num-

meriert (Abb. 11). Entsprechend Ihrer Ausrüs-

tung sind den einzelnen Objektiven bereits

werkseitig bestimmte Positionen zugeordnet.

Eine Aufstellung der genauen Positionierung

der Objektive liegt Ihrer Lieferung bei

(„Identification Sheet“).

Achtung:

Nicht besetzte Gewinde im Revolver mit Staub-

Schutzkappen verschließen!

6.5 Lichtquellen für die Durchlichtachse

Achtung!

Achten Sie darauf, dass das Lampenhaus

von der Stromversorgung getrennt ist. Netz-

stecker und Stromversorgung während der

Montage vom Netz trennen.

Achtung!

Es besteht generell bei den Lichtquellen

eine Gefährdung durch Strahlung (Blen-

dung, UV-Strahlung, IR-Strahlung). Lampen

müssen daher in geschlossenen Gehäusen

betrieben werden.

Lampenhaus 107/2

Dieses Lampenhaus wird mit einer 12V 100W

Halogenglühlampe verwendet, die bereits ein-

gebaut ist.

Soll die Lampe ausgewechselt werden, gehen

Sie folgendermaßen vor:

• Lösen Sie die Befestigungsschraube am Ge-

häuse (Abb. 12).

• Gehäuse nach oben abnehmen.

• Entfernen Sie die Lampe.

Abb. 11

Objektivrevolver mit beschrifteten Objektivaufnahmen

6. Montage

• Stecken Sie die neue Lampe 12V 100W (13.1)

mit der Schutzhülle bis gegen den Anschlag

gerade in den Sockel. Achten Sie darauf, dass

die Lampe gerade sitzt.

• Entfernen Sie die Schutzhülle der Lampe.

Achtung!

Schutzhülle der Lampe erst nach dem Ein-

setzen entfernen. Fingerabdrücke unbedingt

vermeiden.

• Setzen Sie das Gehäuse wieder auf und arre-

tieren Sie es mit der Befestigungsschraube.

Abb. 12

Lampenhaus 107/2

Lösen der Befesti-

gungsschraube

Abb. 13

Lampenhaus 107/2,

geöfffnet

1Fassung mit

Halogenglühlampe

2Kollektor

Abb. 14 Stativrückseite

1Lampenhausaufnahme Auflicht

2Lampenhausaufnahme Durchlicht

312 V 100 W Anschluss für Durchlicht (Symbol: )

412 V 100 W Anschluss für Auflicht (Symbol: )

234

• Setzen Sie das Lampenhaus an die Durch-

licht-Lampenhausaufnahme (14.2) an und be-

festigen Sie es mit der seitlichen Klemm-

schraube.

• Schließen Sie das Lampenhaus an die Strom-

versorgung für Durchlicht (Symbol: ) (14.3)

an.

6. Montage

6.6 Lichtquellen für die Auflichtachse

Achtung!

Es besteht generell bei den Lichtquellen eine

Gefährdung durch Strahlung (Blendung, UV-

Strahlung, IR-Strahlung). Lampen müssen

daher in geschlossenen Gehäusen betrieben

werden.

Achten Sie darauf, dass das Lampenhaus

von der Stromversorgung getrennt ist. Netz-

stecker und Stromversorgung während der

Montage vom Netz trennen.

Bei Montagearbeiten an Xe-Brennern immer

mitgelieferte Schutzhandschuhe und Ge-

sichtsschutz (Abb. 15) tragen (Explosionsge-

fahr).

Glasteile des Brenners nie mit bloßen Hän-

den anfassen.

Nie in den direkten Strahlengang blicken

(Blendgefahr).

Lampenhaus 106/106 z

Dieses Lampenhaus wird mit einer Halogen-

glühlampe 12V 100W oder verschiedenen Gas-

entladungslampen verwendet.

Achtung!

Beachten Sie unbedingt die Gebrauchsan-

weisung und Sicherheitshinweise der

Lampenhersteller!

Vor dem Wechseln von Lampen diese min-

destens 30 min abkühlen lassen!

Abb. 16 Lampenhaus 106/106 z (seitlich, geöffnet)

1Deckel hochgestellt

2Kollektor

3Glühlampe 12 V 100 W oder

Gasentladungslampe in Fassung

4Reflektor (Spiegel)

5, 6, 7 Justierschraube x-y Reflektor

8Befestigungsschrauben für Lampenfassung

9Buchse für Kontaktstecker

898

Abb. 15

Schutzhandschuhe und Gesichtsschutz

6. Montage

Abb. 17 Lampenfassung mit Halogenglühlampe 12 V 100 W

Einsetzen der Halogenglühlampe 12V 100W in

das Lampenhaus 106/106 z

• Lösen Sie die Befestigungsschrauben am Ver-

schlußdeckel und klappen Sie den Ver-

schlussdeckel (16.1) hoch.

• Lösen Sie die Befestigungsschrauben (16.8)

an der Lampenfassung und ziehen Sie die

Fassung heraus (Abb. 17).

• Stecken Sie die Lampe mit der Schutzhülle bis

gegen den Anschlag gerade in den Stiftsockel

ein.

Achtung!

Schutzhülle der Lampe erst nach dem Ein-

setzen entfernen. Fingerabdrücke unbedingt

vermeiden.

• Entfernen Sie die Schutzhülle.

• Setzen Sie die Lampenfassung wieder ein und

ziehen Sie die Befestigungsschrauben (16.8)

wieder an.

• Schließen Sie das Lampenhaus und ziehen

Sie die Befestigungsschrauben wieder an.

• Setzen Sie das Lampenhaus an die Auflicht-

Lampenhausaufnahme (18.1) an und befesti-

gen Sie es mit der seitlichen Klemmschraube.

• Schließen Sie das Lampenhaus an die Strom-

versorgung für Auflicht (Symbol ) (18.4) an.

Abb. 18 Stativrückseite

1Lampenhausaufnahme Auflicht

2Lampenhausaufnahme Durchlicht

312 V 100 W Anschluss für Durchlicht (Symbol: )

412 V 100 W Anschluss für Auflicht (Symbol: )

234

6. Montage

Einsetzen der Gasentladungslampen (Hg und

Xe) in das Lampenhaus 106/106z

Hg- und Xe-Lampen werden mit separaten Vor-

schaltgeräten betrieben.

Bitte unbedingt die gesonderte Anleitung dieser

Vorschaltgeräte beachten.

Folgende Gasentladungslampen sind einsetz-

bar und erfordern unterschiedliche Stromver-

sorgungsgeräte und Lampenfassungen (Abb. 19):

Typ Typische Lebensdauer*

Hg-Höchstdrucklampe 50 W (Wechselstrom) 100 h

Hg-Höchstdrucklampe 100 W (Gleichstrom) 200 h

Hg-Höchstdrucklampe 100 W (Gleichstrom, Typ 103 W/2) 300 h

Xe-Hochdrucklampe 75 W (Gleichstrom) 400 h

* Bitte beachten Sie die Datenblätter der Lampenhersteller.

6. Montage

Achtung!

Hg 50-Brenner:

Die Beschriftung muss nach dem Einbau

aufrecht stehen.

Ein evtl. vorhandener Glas-Abschmelznippel

(19a.4) wird durch Drehen des Brenners so

ausgerichtet, dass der Nippel später nicht

im Strahlengang, sondern seitlich orientiert

ist.

Xe 75-Brenner:

Schutzhülle des Brenners (19b.5) nach dem

Einbau entfernen.

• Zum Öffnen des Lampenhauses 106 z lösen

Sie die Befestigungsschrauben am Ver-

schlussdeckel.

• Entfernen Sie die Transportsicherung (roter

Kunststoffstab anstelle des Brenners) der

Lampenfassung. Lösen Sie dazu die obere

Klemmung (19.1). Ziehen Sie das Kühlelement

(19.3) nach oben und drehen Sie es zur Seite.

Lösen Sie die untere Klemmung (19.2) und ent-

fernen Sie die Transportsicherung.

• Setzen Sie den Brenner in umgekehrter Rei-

henfolge ein.

Abb. 19 a-c Lampenfassungen für Gasentladungslampen

1 Obere Klemmung, 2 Untere Klemmung, 3 Kühlelement

4 Abschmelznippel des Hg 50-Brenners, 5 Schutzhülle des Xe 75-Brenners

Hg 50

Hg 100

Xe 75

6. Montage

Abb. 22 Rückseite des Vorschaltgerätes ebq 100

1Lampenanschluss

• Setzen Sie die Lampenfassung wieder ein und

ziehen Sie die Befestigungsschrauben (20.8)

wieder an.

• Schließen Sie das Lampenhaus und ziehen

Sie die Befestigungsschrauben wieder an.

• Setzen Sie das Lampenhaus an die Auflicht-

Lampenhausaufnahme (21.1) an und befesti-

gen Sie es mit der seitlichen Klemmschraube.

• Schließen Sie das Lampenhaus am Vorschalt-

gerät (22.1) an.

Abb. 20 Lampenhaus 106/106 z (seitlich, geöffnet)

1Deckel hochgestellt

2Kollektor

3Glühlampe 12 V 100 W oder

Gasentladungslampe in Fassung

4Reflektor (Spiegel)

5, 6, 7 Justierschraube x-y Reflektor

8Befestigungsschrauben für Lampenfassung

9Buchse für Kontaktstecker

898

Abb. 21 Stativrückseite

1Lampenhausaufnahme Auflicht

2Lampenhausaufnahme Durchlicht

312 V 100 W Anschluss für Durchlicht (Symbol: )

412 V 100 W Anschluss für Auflicht (Symbol: )

234

6. Montage

Abb. 25 Entfernen der Frontabdeckung

1Filteraufnahme

2Arretierungsstift

3Frontabdeckung

Abb. 26 Einsetzen des Filter-bzw. Reflektorwürfels

1Halterung

Abb. 23 Filterwürfel,

Vorderseite

6.7 Bestückung der Auflicht-Revolverscheibe

Die Aufnahmen an der Revolverscheibe sind

nummeriert. Entsprechend Ihrer Ausrüstung

sind den einzelnen Filter-bzw. Reflektorwürfeln

bereits werkseitig bestimmte Positionen zuge-

ordnet. Eine Aufstellung liegt Ihrer Lieferung bei

(„Identification Sheet“).

Zum Einsetzen der Filter- bzw. Reflektorwürfel

gehen Sie folgendermaßen vor:

• Bestücken Sie die Auflicht-Revolverscheibe

nur in ausgeschaltetem Zustand des Mikro-

skops.

• Öffnen Sie die Frontabdeckung am Mikro-

skop-Oberteil (Abb. 25). Drücken Sie den

Arretierungsstift (25.2) um die Revolver-

scheibe zu drehen. Beim Loslassen des

Arretierungsstifts rastet die Revolverscheibe

wieder ein.

• Setzen Sie einen Filterwürfel bzw. Reflektor-

würfel entsprechend des beigefügten

„Identification Sheet“ in die Ihnen frontal zu-

gewandte Halterung ein.

Dazu setzen Sie den Filter- bzw. Reflektor-

würfel an der rechten Seite an und rasten ihn

nach links in die Halterung (Abb. 26) ein.

• Drücken Sie den Arretierungsstift (25.2) und

drehen Sie den Filter-Revolver bis zur näch-

sten Rast-Position weiter.

• Achten Sie darauf, dass der Revolver einra-

stet (Arretierungsstift springt nach vorne) und

setzen Sie wie oben beschrieben den näch-

sten Filter- bzw. Reflektorwürfel ein.

• Sind alle Filter- bzw. Reflektorwürfel einge-

setzt, schließen Sie die Frontabdeckung wieder.

Abb. 24 Filterwürfel,

Rückseite

6. Montage

6.8 Polarisator und Analysator

Durchlichtpolarisator: ICT/P

• Befestigen Sie den Durchlicht-Polarisator

ICT/P mit der linken Klemmschraube an der

Unterseite des Kondensorhalters (Abb. 27).

• Stellen Sie sicher, dass der rote Indexpunkt

an der Frontseite des Polarisators auf 0 steht.

• Stecken Sie ggf. die Kompensatoren (λ- ,λ/4-

Platten oder elliptische Kompensatoren) in

die Aufnahme des Polarisators (Abb. 28) bzw

in den Kompensationsschlitz.

Auflichtpolarisatoren:

Polarisator R/P, drehbarer Polarisator,

Polarisator L/ICR, Polarisator R/ICR

• Entfernen Sie die Steckkappe auf der rechten

Seite der Auflichtachse (Abb. 29).

• Schieben Sie den Polarisator bis zur Rastung

in die Aufnahme.

Achtung:

Polarisator nur in die vordere Aufnahme schieben.

Motorischer Polarisator

• Im Kondensor DIC ist ein motorischer Polari-

sator bereits eingebaut und betriebsbereit.

Abb. 27 Montage des Durchlicht-Polarisators ICT/P

1Klemmschraube

Abb. 28 Einsetzen der Kompensatoren

Abb. 29 Einsetzen des Polarisators

1Die Steckkappe wird durch den Polarisator ausge-

tauscht.

6. Montage

Durchlicht- und Auflichtanalysator

• Entfernen Sie die Steckkappe auf der linken

Seite des Stativs.

• Schieben Sie den Analysator bis zur Rastung

in die Aufnahme (Abb. 30).

Motorischer Analysator

• Setzen Sie den Analysator-Würfel wie unter

„6.7 Bestückung der Auflicht-Revolver-

scheibe“ → S. 30 beschrieben in die entspre-

chende Position am Filter-Revolver ein. Die

richtige Position entnehmen Sie bitte der bei-

gefügten Liste („Identification Sheet“).

Abb. 30 Einsetzen des Analysators

1Die Steckkappe wird durch den Analysator ausge-

tauscht.

6.9 DIC-Prismen

• Stecken Sie den Objektiv-Prismenschieber in

den Tubus-Schlitz ein (Abb. 31.1). Der Kenn-

buchstabe muss mit dem Kennbuchstaben auf

dem Objektiv übereinstimmen.

• Beim Mikroskop Leica DM5000 B sind die DIC-

Prismen bereits in der DIC-Scheibe oberhalb

des Objektivrevolvers eingesetzt (Abb. 68).

Abb. 31 Einstecken des Objektiv-Prismenschiebers

1Objektiv-Prismenschieber

6. Montage

6.10 Optionales Zubehör

Ergomodul

Zur Erhöhung des Tubuseinblicks kann zwischen

Tubus und Tubusaufnahme das Ergomodul ein-

gesetzt werden.

Die Befestigung erfolgt durch die seitliche

Klemmschraube.

Spiegelhaus

• Setzen Sie das Spiegelhaus direkt an die

Lampenhausaufnahme an der Stativrückseite

an und befestigen Sie es mit der seitlichen

Klemmschraube.

• Setzen Sie das Lampenhaus bzw. die Lampen-

häuser am Spiegelhaus an und befestigen Sie

es mit der zugehörigen seitlichen Klemm-

schraube.

Abb. 32

1Einsetzen der Booster-Linse

Booster-Linse

• Setzen Sie den Filterschieber in die vordere

Aufnahme an der rechten Stativseite ein

(32.1, 33.1).

6. Montage

Abb. 34 Stativrückseite Leica DM4000 B/M

1Netzschalter

2Spannungsversorgung

Abb. 35 Anschlussfeld Elektronikbox CTR5000

1Anschluss Mikroskop

2Spannungsversorgung

Abb. 36 Stativrückseite Leica DM5000 B

1Anschluss Elektronikbox CTR5000

6.11 Anschluss an die Stromversorgung

Nach Abschluss der Montagearbeiten wird das

Stativ mit dem Netzkabel an die Spannungs-

versorgung angeschlossen (34.2).

6.12 Anschluss an die Elektronikbox CTR5000

Nur für Leica DM5000 B:

• Verbinden Sie die Anschlüsse (35.1) und (36.1)

mit dem 25-poligen Mikroskop-Kabel.

• Schließen Sie die Elektronikbox über das

Netzkabel an die Spannungsversorgung (35.2)

an.

7. Inbetriebnahme

7.1 Funktionsprinzip

Die wichtigsten Funktionen des Mikroskops können einfach durch Funktionstasten aufgerufen

werden.

• Das Mikroskop kann auf Tastendruck zwischen verschiedenen Kontrastverfahren um-

schalten.

• Das Mikroskop erkennt das gewählte Objektiv und das dazugehörige Kontrastverfahren. Die

Werte für Intensität (INT), Aperturblende (AP) und Feldblende (FD) sind daher immer richtig

gesetzt.

• Die Werte für INT, AP und FD können individuell geändert werden. Die vorherige Einstellung

wird dadurch überschrieben. Die aktuelle Einstellung wird gespeichert.

• Die Angabe für INT, AP und FD bezieht sich immer auf die gerade aktivierte Lichtachse

(Durchlicht oder Auflicht).

• Neben den festgelegten Funktionstasten für INT, AP und FD gibt es auch variable Funk-

tionstasten.

Variable Funktionstasten:

• Bei Lieferung sind die Funktionstasten mit Funktionen vorbelegt, die der Konfiguration Ihres

Mikroskops entsprechen.

• Diese Funktionen können umprogrammiert und/oder Ihren individuellen Wünschen ange-

passt werden.

Hinweis: (Reset-Funktion)

Das Mikroskop kann auf die werkseitig programmierten Funktionen zurückgesetzt werden:

• Drücken Sie im ausgeschalteten Zustand alle 3 variablen Funktionstasten auf dem linken

Stativflügel.

• Stativ einschalten.

• Tasten solange gedrückt halten, bis die Initialisierung abgeschlossen ist.

• Es erscheint die Standard-Anzeige im Display.

• Schalten Sie das Gerät erneut aus und wieder ein. Die Einstellungen sind nun gespeichert.

7. Inbetriebnahme

Möglichen Belegungen der Funktionstasten

Für Leica DM4000 B/DM5000 B:

Funktionstaste Bedeutung

BF Hellfeld Durchlicht

PH Phasenkontrast Durchlicht

ICT Interferenzkontrast Durchlicht

DF Dunkelfeld Durchlicht

POL Polarisation Durchlicht

CHANGE TL Alle Durchlichtkontrastverfahren durchschalten

INT ↑Helligkeit erhöhen (Durchlicht)

INT ↓Helligkeit reduzieren (Durchlicht)

AP ↑Aperturblende öffnen (Durchlicht)

AP ↓Aperturblende schließen (Durchlicht)

FD ↑Feldblende öffnen (Durchlicht)

FD ↓Feldblende schließen (Durchlicht)

SHUTTER TL Durchlichtshutter öffnen/schließen

FLUO Fluoreszenz (letzter Filterwürfel)

CUBE 1 Fluo-Würfel an Position 1 wählen

CHANGE CUBE Fluo-Würfel im Uhrzeigersinn durchschalten (1 → 4)

CHANGE CUBE Fluo-Würfel entgegen dem Uhrzeigersinn durchschalten (4 → 1)

SHUTTER FLUO Fluoreszenzshutter öffnen/schließen

INT FLUO ↑ Helligkeit erhöhen (Fluoreszenz)

INT FLUO ↓Helligkeit reduzieren (Fluoreszenz)

FD FLUO ↑Feldblende öffnen (Fluoreszenz)

FD FLUO ↓Feldblende schließen (Fluoreszenz)

COMBI Kombinationsverfahren

(PH-Fluoreszenz oder ICT-Fluoreszenz)

CHANGE COMBI Alle Kombinationsverfahren durchschalten

CHANGE TUBE Unterschiedliche Strahlenteilung durchschalten

100% VIS 100% Beobachtungsausgang

50:50 50% Beobachtungsausgang/50% Kamera

100% CAMERA 100% Kamera

7. Inbetriebnahme

Für Leica DM4000 M/DM4500 P:

Funktionstaste Bedeutung

BF Hellfeld Auflicht

ICR Interferenzkontrast Auflicht

DF Dunkelfeld Auflicht

POL Polarisation Auflicht

CHANGE RL Alle Auflichtkontrastverfahren durchschalten

INT ↑Helligkeit erhöhen (Auflicht)

INT ↓Helligkeit reduzieren (Auflicht)

AP ↑Aperturblende öffnen (Auflicht)

AP ↓Aperturblende schließen (Auflicht)

FD ↑Feldblende öffnen (Auflicht)

FD ↓Feldblende schließen (Auflicht)

SHUTTER RL Nur DM4000 M: Auflichtshutter öffnen/schließen

FLUO Fluoreszenz (letzter Filterwürfel)

CUBE 1 Fluo-Würfel an Position 1 wählen

CHANGE FLUO Alle Filterwürfel durchschalten

CONOS Nur DM4500 P: Bertrandlinse ist im Strahlengang

(konoskopischer Strahlengang)

FOCUS FINDER Kleinste Auflicht-Feldblende

und auf erneuten Knopdruck wieder zurück zur ursprünglichen Feldblende

BF TL Hellfeld Durchlicht

BF-POL Nur DM4500 P: Polarisation Durchlicht (Konoskopie)

INT ↑Helligkeit erhöhen (Durchlicht)

INT ↓Helligkeit reduzieren (Durchlicht)

AP ↑Aperturblende öffnen (Durchlicht)

AP ↓Aperturblende schließen (Durchlicht)

FD ↑Feldblende öffnen (Durchlicht)

FD ↓Feldblende schließen (Durchlicht)

COMBI Kombinationsverfahren (BF und BF TL)

CHANGE TUBE Unterschiedliche Strahlenteilung durchschalten

100% VIS 100% Beobachtungsausgang

50:50 50% Beobachtungsausgang/50% Kamera

100% CAMERA 100% Kamera

7. Inbetriebnahme

Abb. 37 Display nach der Initialisierung

7.2 Einschalten

• Schwenken Sie zunächst das Objektiv mit der

kleinsten Vergrößerung ein.

• Schalten Sie das Mikroskop bzw. CTR5000 ein.

Alle motorisierten Mikroskopkomponenten

durchlaufen zunächst eine Initialisierungs-

phase.

Nach Abschluss der Initialisierung wird im Dis-

play des Stativs die aktuelle Mikroskopein-

stellung angezeigt (Abb. 37).

Die mikroskopischen Komponenten wie Blen-

den, Kondensor, Licht-und Phasenringe sind be-

reits werkseitig vorzentriert. Durch Transport

und Montage kann jedoch ein Nachzentrieren

nötig sein.

Bevor Sie die dazu notwendigen Schritte aus-

führen, machen Sie sich zuerst mit dem Display

des Stativs und den Bedienelementen vertraut.

Achtung!

Nach dem Einschalten der Gasentladungs-

lampe muss der Brenner sofort justiert wer-

den. Schalten Sie deshalb das Vorschalt-

gerät noch nicht ein. Arbeiten Sie zunächst

im Durchlicht, um die Bedienelemente des

Mikroskops kennenzulernen.

Hinweis:

Das Mikroskop Leica DM4500 P wird werkseitig

mit einem kodierten Konoskopiemodul ausge-

rüstet.

• Durch Verschieben der Bertrandlinse wird der

konoskopische Strahlengang oder der ortho-

skopische Strahlengang aktiviert. Der Zustand

wird im Display mit der Methode „Conos“

oder „TL-Pol“ angezeigt.

7. Inbetriebnahme

7.3 Das Display

(Leica DM4000 B/

DM4000 M/DM4500 P)

Das Display zeigt die aktuellen Mikroskopein-

stellungen. Die Anzeige hängt von der jeweiligen

Mikroskopausrüstung ab. In der ersten Spalte

wird durch entsprechende Symbole angegeben,

um welche Informationen es sich handelt:

Kontrastverfahren, Vergrößerung, Lichtintensi-

tät, Blenden, Lichtteilung bei Fototuben.

Die verwendeten Abkürzungen entnehmen Sie

bitte dem Abkürzungsverzeichnis →

S. 36f.

Kontrastverfahren

Sie finden in der ersten Zeile eine Darstellung

der aktiven Lichtachse (Auflicht oder Durch-

licht), des momentanen Kontrastverfahrens und,

falls verwendet, des aktuellen Filterwürfels.

Es folgt die Anzeige des Shutterstatus für den

Durchlicht- und den Auflichtshutter:

Durchlicht-Shutter auf

Durchlicht-Shutter zu

Auflicht-Shutter auf (nur bei Fluoreszenz)

Auflicht-Shutter zu (nur bei Fluoreszenz)

Vergrößerung

Die aktuelle Objektivvergrößerung (OBJ), even-

tuell gefolgt von der Nachvergrößerung des Ver-

größerungswechslers* wird angegeben, eben-

so wie die Gesamtvergrößerung:

Σ = Objektiv x Nachvergrößerung x Okular

↓

↑

Lichtintensität

Die aktuelle Helligkeitseinstellung ist durch ei-

nen Balken grafisch dargestellt. Zusätzlich wird

die Lichtintensität in 20 (grob) bzw. 255 (fein)

Schritten angegeben →

S. 59.

Blenden

Die Werte für die Leuchtfeldblende (FD) und die

Aperturblende (AP) werden numerisch angege-

ben. Die Leuchtfeldblende im Auflicht kann so-

wohl rund als auch rechteckig sein. Entspre-

chend wird die Bezeichnung FD in runde oder

eckige Klammern gesetzt: (FD) oder [FD].

Hinweis:

Eckige Leuchtfeldblenden werden bei Verwen-

dung einer Digitalkamera empfohlen.

Lichtaufteilung

Ist ein motorischer Tubus vorhanden, wird die

Lichtaufteilung zwischen Okular (Eye) und Foto-

ausgang (Docu) in % angegeben.

Hinweis:

Nach der Initialisierungsphase, aber auch wäh-

rend des Mikroskopierens, kann die Anzeige

blinken. Das ist immer dann der Fall, wenn das

ausgewählte Kontrastverfahren nicht mit den

mikroskopischen Einstellungen durchführbar ist.

Es kann z.B. ein Objektiv eingeschwenkt sein,

das nicht für das gewählte Kontrastverfahren

geeignet ist.

Überprüfen Sie dann Ihre Einstellungen.



7. Inbetriebnahme

Die Tasten AP (38.4) für die Aperturblende und

FD (38.2) für die Feldblende werden zum Öff-

nen bzw. Schließen der jeweiligen Blende ver-

wendet.

Hinweis:

Änderungen der Lichtintensität sowie der Ein-

stellung von Apertur- und Leuchtfeldblende

werden für das jeweilige Objektiv und Kontrast-

verfahren abgespeichert.

Variable Funktionstasten

Passend zu Ihrer Mikroskopausrüstung erfolgt

werkseitig eine Vorbelegung der variablen Funk-

tionstasten. Die Tasten sind entsprechend be-

schriftet. Die Tastenbelegung entnehmen Sie

bitte dem „Identification Sheet“.

Die Bedeutung der Abkürzungen entnehmen Sie

bitte der Liste → S.36f.

Hinweis:

Das Ändern der Tastenbelegung ist nur über

die Software LAS: Modul - „Configuration“ mög-

lich.

7.4 Die Funktionstasten

Sowohl an der rechten, wie auch an der linken

Stativseite befinden sich eine Reihe von

Funktionstasten. Dabei gibt es fest definierte,

wie auch variable Tasten. Die variablen Funkti-

onstasten haben je nach Mikroskopausrüstung

unterschiedliche Bedeutung.

Fest definierte Funktionstasten auf der linken

Stativseite

Die Taste TL/IL (38.1) schaltet zwischen Auf-

licht- und Durchlichtachse um. Dabei wird

jeweils das zuletzt genutzte Kontrastverfahren

wiedereingestellt.

Mit den Tasten INT (38.3) wird die Lichtintensität

individuell angepasst. Die Einstellung kann in

groben und feinen Schritten erfolgen. Gleichzei-

tiges Drücken der beiden INT-Tasten schaltet

zwischen Grob-und Feineinstellung um.

Die Anzeige im Display ändert sich entprechend

→

S. 59.

Abb. 38 Fest definierte Funktionstasten (linke Stativseite)

1Wechsel Durchlicht/Auflicht

2Aperturblende

3Lichtintensität

4Feldblende

7. Inbetriebnahme

Abb. 40 Kondensorzentrierung

1Zentrierschrauben

7.5 Köhlersche Beleuchtung

7.5.1 Durchlicht

Für jedes Objektiv sind bereits sinnvolle Werte

für die Aperturblende und die Leuchtfeldblende

eingestellt. Außerdem ist der Kondensor bereits

werkseitig zentriert.

Bedingt durch den Aus- und Wiedereinbau des

Kondensors kann jedoch in einigen Fällen eine

Nachzentrierung des Kondensors nötig sein.

Überprüfen Sie deshalb die Kondensor-

zentrierung.

Die folgenden Schritte werden für die Durch-

licht-Hellfeldbeleuchtung erklärt.

• Wählen Sie ein Objektiv mit mittlerer Vergrö-

ßerung (10x-20x).

• Aktivieren Sie bei Bedarf die Durchlichtachse

durch Drücken der Taste TL/IL (38.1). Im Dis-

play erscheint in der ersten Zeile TL.

Hinweis für DM4500 P: Achten Sie darauf,

dass die Bertrandlinse ausgeschwenkt ist..

Abb. 39 Tisch mit Präparatehalter

1Objektbewegung (X-Richtung)

2Objektbewegung (Y-Richtung)

3Präparatehalter

4Kondensorhöhenverstellung

• Wählen Sie als Kontrastverfahren Hellfeld

durch Drücken der Taste BF (eine der varia-

blen Funktionstasten hinter den Fokushand-

rädern).

Im Display wird in der ersten Zeile TL BF an-

gezeigt.

• Legen Sie nun ein Präparat in den Präparate-

halter des Tisches ein (39.3).

• Fokussieren Sie auf das Präparat. Das Fokus-

handrad an der linken Stativseite ermöglicht

die Fokussierung in groben und feinen Schrit-

ten. Auf der rechten Stativseite befindet sich

ebenfalls ein Fokushandrad zur Fein-

fokussierung.

• Stellen Sie die Lichtintensität mit den Tasten

INT (38.3) ein.

• Schließen Sie die Leuchtfeldblende mit der

Funktionstaste FD (38.2) bis der Rand der

Blende in der Präparateebene erscheint.

7. Inbetriebnahme

• Mit der Kondensorhöhenverstellung (39.4)

verstellen Sie den Kondensor bis der Rand der

Leuchtfeldblende scharf abgebildet ist.

• Liegt das Bild nicht in der Sehfeldmitte (41c),

muss der Kondensor mit Hilfe der beiden Zen-

trierschrauben (40.1) in die Mitte des Sehfel-

des bewegt werden.

• Öffnen Sie die Leuchtfeldblende so weit, dass

sie gerade aus dem Sehfeld verschwindet

(41d).

Achtung:

Die Kondensorhöheneinstellung ist abhängig

von der Präparatdicke und muss ggf. für jedes

Präparat neu eingestellt werden.

Abb. 41 Köhlersche Beleuchtung

aLeuchtfeldblende nicht fokussiert, nicht zentriert,

bLeuchtfeldblende fokussiert, jedoch nicht zentriert,

cLeuchtfeldblende fokussiert und zentriert,

Durchmesser jedoch zu klein,

dLeuchtfelddurchmesser = Sehfelddurchmesser

(Köhlersche Beleuchtung)

7.5.2 Auflicht

Für jedes Objektiv sind bereits sinnvolle Werte

für die Aperturblende und die Leuchtfeldblende

eingestellt. Außerdem ist das Auflichtmodul be-

reits werkseitig zentriert.

Bedingt durch den Transport und Aufbau des

Statives kann jedoch in einigen Fällen eine

Nachzentrierung des Auflichtmoduls nötig sein.

Überprüfen Sie deshalb die Apertur- und Feld-

blendenzentrierung.

Die folgenden Schritte werden für die Auflicht-

Hellfeldbeleuchtung erklärt.

• Wählen Sie ein Objektiv mit mittlerer Vergrö-

ßerung (10x-20x).

• Aktivieren Sie bei Bedarf die Auflichtachse

durch Drücken der Taste TL/IL (38.1).

Im Display erscheint in der ersten Zeile IL.

• Wählen Sie als Kontrastverfahren Hellfeld

durch Drücken der Taste IL-BF (DM4000 M)

oder Fluoreszenz durch Drücken der Taste

FLUO (DM4000 B, DM5000 B).

Diese Funktionen können den variablen Funk-

tionstasten am Stativ zugeordnet werden.

Im Display wird in der ersten Zeile IL BF /

FLUO angezeigt.

• Legen Sie nun ein Präparat in den Präparate-

halter des Tisches ein (39.3).

• Fokussieren Sie auf das Präparat mit den

Fokushandrädern.

• Stellen Sie die Lichtintensität mit den Tasten

INT (38.3) ein.

7. Inbetriebnahme

Justieren der Leuchtfeldblende

• Schließen Sie die Leuchtfeldblende mit der

Funktionstaste FD (38.4) bis der Rand der

Blende (rund oder eckig) in der Präparate-

ebene erscheint.

• Ist die Begrenzung der Feldblende nicht in der

Sehfeldmitte, muss die Feldblende mit Hilfe

der beiden Zentrierschrauben (42a.1) auf der

rechten Seite des Stativs in die Mitte des Seh-

feldes bewegt werden.

• Öffnen Sie die Leuchtfeldblende mit den Funk-

tionstasten FD (38.4) so weit, dass sie gerade

aus dem Sehfeld verschwindet.

• Bei der Verwendung einer Digitalkamera wird

die Verwendung einer rechteckigen Leucht-

feldblende empfohlen. Passen Sie die Größe

der Blende an die Chipgröße der Kamera an.

Justieren der Aperturblende

(nur für DM4000 M(DM4500 P)

• Entfernen Sie ein Okular (z.B. rechts).

• Schließen Sie die Aperturblende mit der Funk-

tionstaste AP (38.2) bis der Rand der Blende in

der Austrittspupille des Objektivs (Apertur-

blendenebene) erscheint.

• Liegt das Bild nicht in der Sehfeldmitte der

Austrittspupille, muss die Aperturblende mit

Hilfe der beiden Zentrierschrauben (42b.2)

links am Stativ in die Mitte der Austrittspupille

bewegt werden.

• Öffnen Sie die Aperturblende so weit, dass sie

ca. 2/3 des Sehfeldes abdeckt.

Abb. 42a Justierung der Feldblende in der Auflichtachse

1Justierschrauben für Verschiebung der Feldblende

Abb. 42b Justierung der Aperturblende in der Auflichtachse

1Justierschrauben für Verschiebung der Aperturblende

7. Inbetriebnahme

Abb. 44a Zentriervorgang Phasenkontrast

PH=Phasenkontrastring, LR=Lichtring

aKondensor in Position Hellfeld (BF)

bKondensor in Position Phasenkontrast (PH),

Lichtring LR nicht zentriert

cLichtring und Phasenring zentriert

Abb. 43 Einstellfernrohr

1Verstellbare Augenlinse

2Klemmring zur Fixierung der Fokuslage

ab c

7.6 Phasenkontrastringe überprüfen

Ist Ihr Mikroskop für die Verwendung von

Phasenkontrast ausgerüstet, sind im Kondensor

die zu den Objektiven passenden Lichtringe ein-

gebaut.

Die Lichtringe sind bereits werkseitig zentriert.

Die Zentrierung sollte jedoch noch einmal über-

prüft werden.

Hinweis:

Jedem Objektiv ist ein eigener Lichtring in der

Kondensorscheibe zugeordnet. Deshalb muss

die Überprüfung für jedes Objektiv durchgeführt

werden. Beim Einschwenken eines für Phasen-

kontrast geeigneten Objektivs wird der entspre-

chende Lichtring automatisch eingestellt.

• Drücken Sie die Taste BF (Hellfeld) (eine der

variablen Funktionstasten hinter den Fokus-

handrädern).

• Setzen Sie anstelle eines Okulars das Einstell-

fernrohr (Abb. 43) in den Beobachtungstubus

ein.

• Schwenken Sie das Phasenkontrastobjektiv

mit der kleinsten Vergrößerung ein.

• Fokussieren Sie das Präparat mit dem Fokus-

handrad.

• Stellen Sie die Ringstruktur (44a.a) scharf, in-

dem Sie den Klemmring (43.2) etwas lockern

und die Augenlinse (43.1) verschieben.

• Ziehen Sie den Klemmring wieder an.

• Drücken Sie die Taste PH (Phasenkontrast).

Die Ringblende (Lichtring) im Kondensor wird

eingeschwenkt.

• Sind Lichtring und Phasenring nicht, wie in

Abb. 44a.c gezeigt, deckungsgleich, muss der

Lichtring zentriert werden.

7. Inbetriebnahme

Abb. 45 Reflektorwürfel zur Lampenjustierung

• Stecken Sie an beiden Seiten des Kondensors

die Zentrierschlüssel durch die dafür vorge-

sehenen Öffnungen (44b.1).

• Drehen Sie die Zentrierschlüssel, bis der

dunkle Ring (Phasenring im Objektiv) dek-

kungsgleich mit dem geringfügig schmaleren

hellen Ring (Lichtring im Kondensor) ist (44a. c).

Hinweis:

Beim Objektivwechsel dürfen sich die Zentrier-

schlüssel nicht mehr in den für die Zentrierung

vorgesehenen Öffnungen befinden.

• Wiederholen Sie den Vorgang für alle weite-

ren Phasenkontrastobjektive.

• Nach dem Zentrieren den Zentrierschlüssel

unbedingt wieder herausnehmen.

Abb. 44b Zentrierung Lichtringe

1Zentrierschlüssel in Zentrieröffnung Phasenkontrast

2Zentrieröffnung Polarisationskontrast

7.7 Einstellung des motorischen Polarisators

(DM4500 P/DM5000 B)

• Wählen Sie das Verfahren POL (eine der va-

riablen Funktionstasten am Stativ oder auf

dem LeicaScreen).

• Stecken Sie den Zentrierschlüssel in die dafür

vorgesehene Öffnung am Kondensor (44b.2).

• Stellen Sie die optimale Auslöschung (max.

Dunkelheit!) ein.

7.8 Justieren der Lichtquellen

Durchlichtachse (TL) mit Lampenhaus 107/2

Das Lampenhaus 107/2 mit Halogenglühlampe

12 V 100 W ist fest eingestellt. Eine Zentrierung

der Lampe entfällt.

7. Inbetriebnahme

Auflichtachse (IL) mit Lampenhaus 106 z

• Bei Verwendung eines Vorschaltgerätes wird

dieses zuerst eingeschaltet.

• Aktivieren Sie bei Bedarf die Auflichtachse

mit der Funktionstaste TL/IL. Es erscheint

FLUO (Leica DM4000 B/ DM5000 B) oder IL

(Leica DM4000 M/DM4500 P) im Display.

• Setzen Sie den Reflektor zur Lampen-

justierung (Abb. 45) statt eines Filterwürfels in

den Filterrevolver ein. Schalten Sie dazu zu-

nächst das Gerät aus. (Siehe →

S. 30).

Merken Sie sich die Bezeichnung des ausge-

tauschten Filterwürfels.

Hinweis:

Es wird empfohlen, den Filterwürfel links neben

dem Reflektorwürfel ebenfalls zu entfernen, um

Fehler bei der Justierung zu vermeiden.

• Drehen Sie den Reflektor in den Strahlengang.

Der Reflektor hat dann die richtige Position

erreicht, wenn im Display rechts oben die Be-

zeichnung des ausgetauschten Filterwürfels

angezeigt wird.

Achtung!

Nie in den direkten Strahlengang blicken!

Bei Umschaltung auf Reflektor BF oder Smith

besteht Blendgefahr!

Achtung!

Es besteht generell bei den Lichtquellen

eine Gefährdung durch Strahlung (Blen-

dung, UV-Strahlung, IR-Strahlung).

Beim Lampenhaus 106 z werden direktes

Wendelbild (bei Halogen-Glühlampe) bzw. direk-

tes Bild des Lichtbogens (bei Gasentladungs-

lampen) und dessen Spiegelbild getrennt fokus-

siert und zueinander justiert.

An der linken Seite des Mikroskops befindet

sich ein Justierfenster (1.14, S. 15), in dem die

Lichtquelle abgebildet wird.

Unter Beobachtung der Lichtquelle im Justier-

fenster wird die Lampe wie folgt justiert.

Abb. 46 Lampenhaus 106 z

1Höhenjustierung der Lampe

2,4 Höhen- und Seitenjustierung des Spiegelbildes

3Fokussierung des Reflektors

5Seitenjustierung der Lampe

6Kollektor (Fokussierung des Lampenbildes)

516

7. Inbetriebnahme

Zentrieren der Halogen-Glühlampe 12 V 100 W

• Im Justierfenster sehen Sie das direkte

Wendelbild und das Spiegelbild, die in der Re-

gel gegeneinander verschoben sind.

• Stellen Sie das direkte Wendelbild mit dem

Kollektor scharf (46.6).

• Schwenken Sie das Spiegelbild des Wendels

mittels der Justierknöpfe an der Rückseite

des Lampenhauses (46.2,46.4) zur Seite oder

ganz aus dem Strahlengang. Es bleibt das fo-

kussierte Bild des Wendels sichtbar (Abb. 47).

• Justieren Sie das direkte Wendelbild mit den

Justierknöpfen (46.1) und (46.5), sodass die

Zentrierfläche halb ausgefüllt ist (Abb. 48).

• Schwenken Sie nun das Spiegelbild des Wen-

dels mit den Justierknöpfen (46.2) und (46.4)

wieder ein und stellen Sie es mit Hilfe des Re-

flektors scharf (46.3).

• Richten Sie das Spiegelbild symmetrisch zu

dem Wendelbild aus (Abb. 49). Benutzen Sie

dazu wieder die Justierknöpfe (46.2) und

(46.4).

• Defokussieren Sie das Bild mit dem Kollektor-

knopf (46.6) bis Wendel- und Spiegelbild nicht

mehr zu erkennen sind und das Bild homogen

ausgeleuchtet ist.

• Tauschen Sie den Reflektor zur Lampen-

justierung wieder gegen den ursprünglichen

Filterwürfel aus.

Hinweis:

Schalten Sie dazu das Gerät aus.

Abb. 47 Direktes Wendelbild fokussiert, aber dezentriert

(in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 48 Direktes Wendelbild in Sollposition

(in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 49 Direktes Wendelbild und Spiegelbild in

Sollposition (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

7. Inbetriebnahme

Zentrieren der Quecksilberlampe Hg 50 W

• Im Justierfenster sehen Sie das direkte Bild

des Lichtbogens und das Spiegelbild, die in

der Regel gegeneinander verschoben sind.

• Stellen Sie das direkte Bild mit dem Kollektor

scharf (46.6).

• Schwenken Sie das Spiegelbild des Lichtbo-

gens mit den Justierknöpfen an der Rückseite

des Lampenhauses (46.2,46.4) zur Seite oder

ganz aus dem Strahlengang. Es bleibt das fo-

kussierte Bild des Lichtbogens sichtbar

(Abb. 50).

• Platzieren Sie das direkte Bild des Lichtbo-

gens mit den Justierknöpfen (46.1) und (46.5)

rechts oder links an einer gedachten Mittelli-

nie der Zentrierfläche (Abb. 51).

• Schwenken Sie nun das Spiegelbild des Licht-

bogens mit den Justierknöpfen (46.2) und

(46.4) wieder ein und stellen Sie es mit Hilfe

des Reflektors scharf (46.3).

• Richten Sie das Spiegelbild symmetrisch zu

dem direkten Bild aus (Abb. 52). Benutzen Sie

dazu wieder die Justierknöpfe (46.2) und

(46.4).

• Defokussieren Sie das Bild nun über den Kol-

lektor mit dem Kollektorknopf (46.6) bis das

Bild des Lichtbogens und das Spiegelbild

nicht mehr zu erkennen sind und das Bild ho-

mogen ausgeleuchtet ist.

• Tauschen Sie den Reflektor zur Lampen-

justierung wieder gegen den ursprünglichen

Filterwürfel aus.

Abb. 52 Direktes Bild des Lichtbogens und Spiegelbild in

Sollposition (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 51 Direktes Bild des Lichtbogens in Sollposition

(in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 50 Direktes Bild des Lichtbogens fokussiert, aber

dezentriert (in Wirklichkeit ist das Bild

unschärfer)

7. Inbetriebnahme

Abb. 55 Direktes Bild des Lichtbogens und Spiegelbild in

Sollposition (in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Zentrieren der Quecksilberlampen

Hg 100 W und Xe 75 W

• Im Justierfenster sehen Sie das direkte Bild

des Lichtbogens und das Spiegelbild, die in

der Regel gegeneinander verschoben sind.

• Stellen Sie das direkte Bild mit dem Kollektor

scharf (46.6).

• Schwenken Sie das Spiegelbild des Lichtbo-

gens mit den Justierknöpfen an der Rückseite

des Lampenhauses (46.2,46.4) zur Seite oder

ganz aus dem Strahlengang. Es bleibt das

fokussierte Bild des Lichtbogens sichtbar

(Abb. 53).

• Platzieren Sie das direkte Bild des Lichtbo-

gens mit den Justierknöpfen (46.1) und (46.5)

in der Mitte der Zentrierfläche, wobei die hel-

le Spitze des Lichtbogens, der Kathoden-

brennfleck, etwas außerhalb der Mitte liegen

soll (Abb. 54).

• Schwenken Sie nun das Spiegelbild des Licht-

bogens mit den Justierknöpfen (46.2) und

(46.4) wieder ein und stellen Sie es mit Hilfe

des Reflektors scharf (46.3).

• Richten Sie das Spiegelbild symmetrisch zu

dem direkten Bild aus (Abb. 55). Benutzen Sie

dazu wieder die Justierknöpfe (46.2) und (46.4).

Die V-förmige Abstrahlung der Lichtbögen von

direktem Bild und Spiegelbild können überla-

gert werden.

Achtung!

Die hellen Spitzen der Lichtbögen, die Katho-

denbrennflecke, dürfen jedoch keinesfalls

übereinander projeziert werden, weil dann

durch Überhitzung Explosionsgefahr besteht.

Abb. 54 Direktes Bild des Lichtbogens in Sollposition

(in Wirklichkeit ist das Bild unschärfer)

Abb. 53 Direktes Bild des Lichtbogens fokussiert, aber

dezentriert (in Wirklichkeit ist das Bild

unschärfer)

7. Inbetriebnahme

Achtung!

Bei älteren Lampen ist die Struktur des

Lichtbogens nicht mehr klar erkennbar. Das

Bild ähnelt dann mehr dem einer HG 50-Lam-

pe. Bild und Spiegelbild können daher nicht

mehr exakt übereinander plaziert werden.

Bringen Sie in diesem Fall beide Bilder zur

Deckung.

• Defokussieren Sie das Bild nun über den Kol-

lektor mittels des Knopfes (46.6) bis das Bild

des Lichtbogens und das Spiegelbild nicht

mehr zu erkennen sind und das Bild homogen

ausgeleuchtet ist.

• Tauschen Sie den Reflektor zur Lampen-

justierung wieder gegen den ursprünglichen

Filterwürfel aus.

Hinweis:

Schalten Sie dazu das Gerät aus.

8. Bedienung

Abb. 58 Drehbarer Objekttisch

1Objektverschiebung (Y-Richtung)

2Objektverschiebung (X-Richtung)

3Einstellen der Gängigkeit (Y-Richtung)

4Einstellen der Gängigkeit (X-Richtung)

5Fokushandrad zur Feinfokussierung

8. Bedienung

8.1 Einschalten

Bei Verwendung einer Gasentladungslampe

muss das Vorschaltgerät zunächst separat ein-

geschaltet werden (56.1).

Schalten Sie dann das Mikroskop oder CTR5000

am Netzschalter ein.

Alle motorisierten Mikroskopkomponenten

durchlaufen zunächst eine Initialisierungs-

phase.

Nach Abschluss der Initialisierung wird im

Display (Abb. 57) des Stativs die aktuelle

Mikroskopeinstellung angezeigt.

Abb. 57 Display nach der Initialisierung

8.2 Tische und Objektverschiebung

Verlängern des Koaxialtriebs

• Zum Verlängern ziehen Sie den unteren Griff

(58.2) nach unten. Dann führen Sie den oberen

Griff (58.1) entsprechend nach.

Einstellen der Gängigkeit (Drehmoment)

Das Drehmoment kann individuell durch zwei

Rändel (58.3, 58.4) für X und Y angepasst wer-

den.

Abb. 56 Vorderansicht des Vorschaltgerätes ebq 100

1Netzschalter

2Lampenstatus

1 2

8. Bedienung

Drehen des Tisches

Der Schwenkbereich bei den drehbaren Tischen

beträgt 0°- 110°.

• Um den Tisch zu drehen, lösen Sie die Fest-

stellschraube (59b.1).

• Bringen Sie den Tisch in die gewünschte

Position.

• Ziehen Sie die Feststellschraube wieder an.

Drehtisch Pol (360°)*, Objektführer Pol*

Die Befestigung des Präparates erfolgt entwe-

der mittels zweier federnder Objektklemmen

oder günstiger mit Hilfe des aufsetzbaren Mehr-

format- Objektführers Pol 3 (Abb. 59a). Für Ob-

jektträger mit ca. 26 mm (1“) Breite, ist die

Metallplatte (59a.2) auszuschwenken und das

Objekt gem. Abb. 59a einzulegen. Werden han-

delsübliche Objektträger von 26 mm Breite

senkrecht dazu eingelegt, so wird der Ver-

schiebebereich des Objektführers von ca. 30

mm x 40 mm nicht voll genutzt. Der mitgelieferte

Satz von Rastknopfpaaren ermöglicht Rastab-

stände von 0.1, 0.3, 0.5, 1 und 2 mm. Das Aus-

wechseln erfolgt durch kräftiges axiales Abzie-

hen. Beim Aufstecken des neuen Rastknopfes

auf die richtige Orientierung der Mitnehmer-

stifte im Inneren achten. Die Anschlagschraube

an der Unterseite muss zur Hubbegrenzung bei

kleineren Mikroskoptypen um ca. 2 mm nach

innen versetzt werden.

Die beiden Nonien ermöglichen Winkelmessun-

gen mit Ablesegenauigkeit von 0.1.

45°-Rastung:

• Schrauben Sie den Drehknopf (59a.5) ein, bis

leichter Drehwiderstand spürbar ist.

• Drehen Sie dann den Objekttisch bis zur

nächsten spürbaren Rastung.

• Lockern Sie den Drehknopf und suchen Sie

den Ausgangspunkt der nächsten Rastung (z.

B. Objektdunkelstellung) auf.

• Ziehen Sie den Drehknopf wieder an.

Jetzt kann der Drehtisch in Rastintervallen von

45° gedreht werden.

Abb. 59a Pol-Drehtisch* und Objektführer Pol 3*

1Bohrung für Befestigungsschraube

2Ein-/ausschwenkbarer Hebel für die Halterung

von Objektträgern unterschiedlicher Formate

3Aufbewahrung für Zentrierschlüssel

4Rastknopfpaare

545°-Rastung

6Klemmung Tischdrehung

8. Bedienung

Abb. 59b Drehbarer Objekttisch

1Feststellschraube

2Fokus-Feinfokussierung

3Fokus-Grobfokussierung

8.3 Fokussierung

An der linken Stativseite befindet sich das

Fokushandrad zur Grob- und Feinfokussierung

(Abb. 59b).

An der rechten Stativseite befindet sich eben-

falls ein Fokushandrad, das ausschließlich der

Feinfokussierung dient (58.4).

Die spezielle Form dieses Handrads ermöglicht

es, gleichzeitg den Koaxialtrieb mit der Hand zu

umfassen und mit einem Finger den Feintrieb

zu bedienen.

8.4 Tuben

Hinweis:

Verschließen Sie nicht benutzte Tubusaus-

gänge, da sonst Streulicht die Beobachtung

stören kann.

Hinweis:

Achten Sie darauf, dass beim motorischen Tu-

bus MBDT25+ das Anschlusskabel eingesteckt

ist (60.1).

Augenabstand einstellen

• Stellen Sie den Augenabstand der Okular-

rohre so ein, dass ein deckungsgleiches Ge-

samtbild wahrgenommen wird (Abb. 60).

Abb. 60 Tubuseinstellung

↔

Einstellung des persönlichen Augenabstandes

1Anschluss motorischer Tubus

1↔

8. Bedienung

Abb. 62 Tubus BDT25+ mit Digitalkamera

1Schaltstange

Einblickwinkel einstellen

• Bei den Ergotuben AET22 und EDT22 kann der

Einblickwinkel durch Kippen des Binokular-

einblicks im Bereich von 5° - 32° eingestellt

werden (Abb. 61).

Okularauszug an Armlänge anpassen

• Am Tubus AET22 können die Okulare bis zu

30 mm ausgezogen werden (Abb. 61).

Strahlenteilung bei Fototuben

Tubus EDT22:

Die Lichtaufteilung zwischen Beobachtungs-

und Dokumentationsausgang ist fest eingestellt

(50:50).

Abb. 61 Individuelle Einstellungen am Tubus AET22

Tubus BDT25+:

Die Lichtaufteilung wird manuell durch Heraus-

ziehen einer Schaltstange eingestellt.

Schaltstange Beobachtung Foto

VIS 100 % 0 %

50/50 150 % 50 %

PHOTO 110 % 100 %

Tubus MBDT25+:

Dieser Tubus entspricht dem Dokumentations-

tubus BDT25+, ist jedoch motorisiert.

Die Schaltpositionen werden über eine variable

Funktionstaste am Stativ ausgewählt.

Tubus HC L 2TU:

Die Lichtaufteilung wird manuell durch Heraus-

ziehen einer Schaltstange eingestellt.

Schaltstange Beobachtung Foto

VIS 100 % 0 %

PHOTO 110 % 100 %

8. Bedienung

8.5 Okulare

Hinweis:

Der Blendschutz der Okulare muss beim Mikro-

skopieren mit Brille abgenommen bzw. zurück-

gestülpt werden.

Es wird empfohlen, Brillen mit Mehrbereich-

gläsern (Bifocal- und Gleitsichtgläser) beim Mi-

kroskopieren abzusetzen.

• Wählen Sie bei den schaltbaren Tuben mit

Dokumentationsausgang die Stellung 100% VIS.

Okulare mit eingelegter Strichplatte

• Stellen Sie die Strichplatte durch Verstellen

der Augenlinse im Okular scharf ein.

• Fokussieren Sie das Objekt durch dieses

Okular.

• Schließen Sie dann das Auge und fokussie-

ren Sie das Objekt jetzt nur durch Verstellen

des zweiten Okulars.

Korrektur bei Fehlsichtigkeit

• Blicken Sie mit dem rechten Auge durch das

rechte Okular und stellen Sie das Präparat

scharf ein.

• Sehen Sie danach mit dem linken Auge auf

die gleiche Präparatstelle und drehen Sie

den linken Okularstutzen so lange, bis die

Objektstelle scharf abgebildet wird. Hierbei

das Fokushandrad nicht betätigen!

8.6 Objektive

Die Objektive werden manuell in den Strahlen-

gang eingeschwenkt. Achten Sie darauf, dass

der Revolver einrastet.

Die Position der Objektive im Objektivrevolver ist

werkseitig festgelegt und muss beim Einschrau-

ben der Objektive beachtet werden.

(Siehe Montage Objektive → S. 23 )

Beim Einschwenken des Objektivs stellt das Mi-

kroskop automatisch ein:

• die optimale Einstellung für Leuchtfeldblende

• die optimale Einstellung für die Aperturblende

und die Lichtintensität im jeweiligen Kontrast-

verfahren.

Im Display erscheint die Objektivvergrößerung

sowie die Gesamtvergrößerung → S. 39.

• Beginnen Sie mit einer kleinen Vergrößerung.

Gehen Sie dann zum nächst höheren Objektiv.

• Verwenden Sie bei Immersionsobjektiven das

entsprechende Immersionsmedium.

OIL: nur optisches Immersionsöl nach DIN/

ISO verwenden.

Reinigung → S.78.

W: Wasserimmersion.

IMM: Universalobjektiv für Wasser, Glyzerin,

Ölimmersion.

Achtung!

Sicherheitshinweise zum Immersionsöl be-

achten!

8. Bedienung

Abb. 63a Immersionsobjektiv, entriegelt Abb. 63b Immersionsobjektiv, verriegelt

↔

Bei verriegelbaren Immersionsobjektiven:

• Drücken Sie zum Verriegeln die Frontpartie bis

zum Anschlag nach oben (ca. 2 mm).

• Nach einer leichten Drehbewegung nach

rechts ist das Objektiv verriegelt (Abb. 63b).

Bei Objektiven mit Korrektionsfassung:

• Passen Sie das Objektiv durch Drehen des

Rändels an die Dicke des Deckglases an.

Objektivzentrierung*

(DM4500 P)

Achtung:

Beim Objektivwechsel dürfen sich die Zentrier-

schlüssel nicht mehr in den für die Zentrierung

vorgesehenen Öffnungen befinden.

Bei der Objektivzentrierung (Abb. 64, 65) werden

die Objektive mit Hilfe zweier Sechskant-

schlüssel so lange verschoben, bis die optische

Achse des Objektivs (und damit die Bildmitte)

mit der Drehachse des Objektivtisches überein-

stimmt. Bei richtiger Zentrierung wandert eine

eingestellte Präparatstelle beim Drehen des Ti-

sches nicht aus dem Gesichtsfeld. Ein in Strich-

kreuzmitte befindlicher Objektpunkt ändert da-

her bei einer ganzen Tischdrehung seine

Position nicht. Zur Objektivzentrierung verwen-

det man zweckmäßigerweise ein detailreiches,

kontrastreiches Präparat.

8. Bedienung

Methode II (Abb. 65)

• Verschieben Sie die markante Objektstelle

(65a) in die Mitte des Strichkreuzes M.

• Drehen Sie den Objekttisch, bis die Objekt-

stelle am weitesten von der Strichkreuzmitte

M entfernt ist (Position A, Abb. 65b). Im Ex-

tremfall kann der Punkt A (= maximale Aus-

lenkung der Objektstelle) auch außerhalb des

Gesichtsfeldes liegen.

• Verschieben Sie das Bild durch Drehen der

Zentrierschlüssel so , dass sich die Objekt-

stelle A in der Mitte (= Pos. B) zwischen Pos.

A und Strichkreuzmitte M befindet (65c).

• Verschieben Sie die Objektstelle A nach M

und kontrollieren Sie, ob bei Tischdrehung A

in M verbleibt (65d). Zentriervorgang ggf. wie-

derholen.

Die Objektivzentrierung muss für alle Objektive

durchgeführt werden. Wird ein Objektiv heraus-

geschraubt, z. B. um es zu reinigen, und wieder

in die gleiche Bohrung eingeschraubt, so bleibt

die Zentrierung annähernd erhalten. Wird die

Höhe des Objekttisches über mehrere Zentime-

ter mittels Grobtrieb oder Tischklemmung verän-

dert (z. B. bei unterschiedlich dicken Objekten),

kann die Feinzentrierung für alle Objektive et-

was verlorengehen.

• Schalten Sie Analysator, Tubuslinse 1.6x und

Bertrandlinse aus.

• Engen Sie die Aperturblende stark ein.

• Stecken Sie beide Objektivzentrierschlüssel

oberhalb des zu zentrierenden Objektivs ein.

• Fokussieren Sie das Objekt.

Für die Objektivzentrierung gibt es zwei ähnliche

Methoden:

Methode I (Abb. 64)

• Drehen Sie den Objekttisch und merken Sie

sich die Objektstelle, welche sich nicht auf ei-

ner Kreisbahn bewegt. Diese Objektstelle ent-

spricht der mechanischen Drehachse des Ob-

jekttisches.

• Verschieben Sie diese markante Objektstelle

nun durch Verstellen der beiden Zentrier-

schlüssel in die Strichkreuzmitte.

• Drehen Sie den Objekttisch drehen und verfei-

nern Sie die Zentrierung bei Bedarf.

Abb. 65 Zentriermethode II

Abb. 64 Zentriermethode I

M M

abcd

8. Bedienung

8.7 Vergrößerungswechsler

Optional kann ein codierter Vergrößerungs-

wechsler eingesetzt werden, der manuell be-

dient wird.

An einem Rändel können die folgenden Ver-

größerungsfaktoren eingestellt werden:

B-Stative M-Stative

1x 1x

1,25x 1,5x

1,6x 2x

Der gewählte Faktor wird im Display angezeigt

und bei der Berechnung der Gesamt-

vergrößerung mitberücksichtigt.

8.8 Tubusoptik HC P 1x/1.6x

mit Bertrandlinse (kodiert)

Diese Optik wurde speziell für die Polarisations-

mikroskopie entwickelt, kann jedoch auch für

alle sonstigen Verfahren verwendet werden.

• Schalten Sie die Bertrandlinse ggf. aus und

den Tubusfaktor 1x ein.

Bei der Tubusoptik HC P (Pol) genügt das Um-

schalten auf den Tubusfaktor 1x.

Einstellung von Tuben und Okularen → S. 53f.

Eigenschaften:

• Tubusfaktor 1x, umschaltbar auf 1.6x

• zuschaltbare, kodierte, fokussier- und zentri-

erbare Bertrandlinse

• Irisblende im Zwischenbild zur Ausblendung

kleiner Körner (15 µm bei Objektiv 100x).

Eingebaute depolarisierende Quarzplatte:

Sie verhindert bei geschaltetem Analysator und

eingeschaltetem Polarisator das Auftreten von

Interferenzfarben durch Polarisationseffekte

von Tubusprismen (Pseudopleochroismus), je-

doch nur bei Tubusfaktor 1x in Funktion.

Bei der Anwendung des Tubusfaktors 1.6 fix ist

zu beachten, dass bei hohen Objektiv-

vergrößerungen und Aperturen evtl. die förderli-

che Vergrößerung (Objektivapertur x 1000) über-

schritten wird, so dass diese Übervergrößerung

einen unscharfen Bildeindruck hervorrufen

kann.

8. Bedienung

Abb. 66 Bedienelemente

1Variable Funktionstasten

(auch an der rechten Stativseite)

2Aperturblende

3Durchlicht/Auflicht

4Leuchtfeldblende

5Lichtintensität

12345

8.9 Lichtquellen

• Über die Funktionstasten (66.5) wird die Hel-

ligkeit eingestellt. Dabei sind die Funktions-

tasten INT der gerade aktiven Achse für

Durchlicht (TL) oder Auflicht (IL) zugeordnet.

• Bei TL und IL:

Die Einstellung kann in groben und feinen

Schritten erfolgen. Gleichzeitiges Drücken der

beiden INT-Tasten schaltet zwischen Grob-

und Feineinstellung um. Die Anzeige der

Lichtintensität im Display ändert sich entspre-

chend.

0-20

Grobeinstellung: ======

0-255

Feineinstellung: ----------

• Die Helligkeit wird für jedes Objektiv und je-

des Kontrastverfahren individuell eingestellt

und abgespeichert.

• Bei FLUO:

Die Helligkeit wird in 5 festen Stufen einge-

stellt (FIM):

100% / 55% / 35% / 20% / 10%

8.10 Aperturblende und Leuchtfeldblende

Beide Blenden sind für das aktuelle Objektiv und

das aktuelle Kontrastverfahren bereits werksei-

tig sinnvoll eingestellt.

• Über die Funktionstasten AP (Aperturblende)

(66.2) bzw. FD (Feldblende) (66.4) können die

Blenden jederzeit verändert werden.

Achtung!

Die alten Werte werden dabei überschrieben

und die neuen Werte werden gespeichert!

• Dabei sind die Funktionstasten der gerade ak-

tiven Achse für Durchlicht (TL) oder Auflicht

(IL) zugeordnet.

Achtung!

Bei Verwendung von PH oder DF ist die Apertur-

blende voll geöffnet und kann zur Vermeidung

von Fehlbedienungen nicht geschlossen werden.

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1 Durchlicht

9.1.1 Hellfeld (TL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren BF

(Brightfield).

Drücken Sie dazu die variable Taste BF.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE TL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint BF.

• Legen Sie ein Durchlichtpräparat auf.

• Schwenken Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

9.1.2 Phasenkontrast (TL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren PH

(Phasenkontrast).

Drücken Sie dazu die variable Taste PH.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE TL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint PH.

• Legen Sie ein Durchlichtpräparat auf.

• Schwenken Sie ein geeignetes Objektiv ein.

Objektive, die für Phasenkontrast geeignet

sind, tragen die Gravur PH.

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

Hinweise:

Das Mikroskop wählt automatisch den korrek-

ten Lichtring im Kondensor.

Die Aperturblende wird bei der Wahl des

Phasenkontrastverfahrens ganz geöffnet und

kann nicht verstellt werden.

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/

DM4500 P/DM5000 B

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1.3 Dunkelfeld (TL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren DF

(Darkfield).

Drücken Sie dazu die variable Taste DF.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE TL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint DF.

Der Dunkelfeldring (Dunkelfeldstopp) wird

im Kondensor automatisch eingestellt.

• Legen Sie ein Durchlichtpräparat auf.

• Schwenken Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

Hinweise:

Die maximal anwendbare Objektivapertur für

Dunkelfeld ist 0.75. Alle Objektive mit höherer

Apertur werden automatisch für dieses Verfah-

ren gesperrt (DF in der Anzeige blinkt).

Das Mikroskop wählt automatisch den korrek-

ten Lichtring im Kondensor.

Die Aperturblende wird bei der Wahl des

Dunkelfeldverfahrens ganz geöffnet und kann

nicht verstellt werden.

9.1.4 Polarisation (TL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren POL (Pola-

risation).

Drücken Sie dazu die variable Taste POL.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE TL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint POL.

9.1.4.1 Manuelles Verfahren

• Schwenken Sie den Polarisator an der Unter-

seite des Kondensors in den Strahlengang ein

(Abb. 67a). Stellen Sie sicher, dass der rote

Indexpunkt an der Frontseite des Polarisators

auf 0 steht.

• Schieben Sie dann den Analysator bis zur

Rastung auf der linken Seite des Stativs ein

(Abb. 67b.1).

• Bringen Sie Polarisator und Analysator bis zur

maximalen Dunkelheit in Kreuzstellung.

• Legen Sie ein Präparat auf und schwenken

Sie ein geeignetes Objektiv ein.

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1.4.2 DM4500 P - Untersuchungen

im polarisierten Durchlicht

Nur ein Polarisator

Sollen Präparate statt mit gekreuzten Polarisa-

toren mit anderen Durchlichtverfahren wie Hell-

feld, Phasenkontrast und Dunkelfeld untersucht

werden, so genügt es in den meisten Fällen den

Analysator oder Polarisator auszuschalten. Bei

nicht ausreichender Bildhelligkeit sollten Polari-

sator und Analysator ausgeschaltet werden.

Gefärbte doppelbrechende Objekte können

beim Drehen des Objekttisches oder Polarisa-

tors (Analysator ausgeschaltet) Helligkeits und/

oder Farbschwankungen zeigen, den sogenann-

ten Dichroismus oder Pleochroismus, ein wich-

tiges Indiz bei Kristalluntersuchungen.

Dieser Effekt kann aber bei Nicht-Polarisations-

mikroskopen vorgetäuscht werden, da dort kei-

ne depolarisierende Quarzplatte eingebaut ist,

oder auch wenn bei Durchlicht ein Auflicht-

reflektor im Strahlengang verblieben ist. Dies

gilt auch für die Anwendung der Tubuslinse 1.6x

am DM4500 P.

Gekreuzte Polarisatoren

Nach DIN und ISO verlaufen die Schwingungs-

richtungen entsprechend Tabelle S. 63, es erge-

ben sich bei gekreuzten Polarisatoren aber die

gleichen polarisationsoptischen Erscheinungen,

wenn die Polarisatoren jeweils um 90° ver-

tauscht angeordnet sind.

Enthält das Präparat viele nichtdoppel-

brechende oder undurchsichtige (opake) Parti-

kel, so wird häufig der Analysator um wenige

Grad aus der Kreuzstellung gedreht, so dass

auch diese (bei exakt gekreuzten Polarisatoren

dunkel bleibende Objekte) zumindest etwas

sichtbar werden. Eine Untersuchung bei paral-

lelen Polarisatoren ist nicht üblich, da der Nach-

weis der Doppelbrechung zu unempfindlich ist.

Helligkeitsänderungen beim Drehen doppel-

brechender Objektive

Bei einer Drehung des Objekttisches verändern

doppelbrechende (anisotrope) Objekte perio-

disch ihre Helligkeit. Bei einer vollen Objekt-

drehung treten nach jeweils exakt 90°

insgesamt 4 Auslöschungslagen (auch Normal-

lagen genannt) auf. Exakt 45° zwischen 2

Auslöschungslagen treten 4 Orientierungen der

Maximalintensität, die Diagonallagen oder 45°-

Lagen auf. Bei Auslöschung verlaufen die Ob-

jekt-Schwingungsrichtungen parallel zu den

Durchlassrichtungen der Polarisatoren, bei

Maximalintensität stellen die Objekt-

schwingungsrichtungen die Winkelhalbieren-

den der Polarisatorrichtungen dar. Das Strich-

kreuz im (rechten) Okular von

Polarisationsmikroskopen kann wahlweise N–

S/E –W, also in Polarisatorrichtungen oder um

45° gedreht, also entsprechend der Objekt-

schwingungsrichtungen bei Diagonallage aus-

gerichtet werden.

Abb. 67 Kreuzen der Polarisatoren bei Beobachtung

mit Bertrandlinse, Objektiv hoher Apertur, ohne Objekt

aexakt gekreuzt

bnicht exakt gekreuzt

Bei Spannungen im Kondensor oder im Objektiv

ist Pos. a überhaupt nicht einstellbar

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

Einfach-Übersichtsbeobachtung

• Legen Sie ein Durchlichtpräparat auf den

Polarisator auf.

• Schwenken Sie den Kondensorkopf ein.

• Fokussieren Sie mit einem schwach ver-

größernden Objektiv, z. B. 5x, durch den Kon-

densor.

Wenngleich diese Methode keinen Anspruch

auf gute Abbildungsleistung hat, so ermöglicht

sie z. B. sehr schnelles Sichten von Präparat-

reihen.

λ/4- undλ-Platte, Quarzkeil

λ/4- und λ-Platte werden je nach Ausführung an

der Kondensorunterseite oder bei Polarisations-

mikroskopen in die Kondensorscheibe 8fach

eingebaut (die Schwingungsrichtung γ ver-

läuft: ) oder in den Tubusschlitz eingesteckt.

Der Tubusschlitz ist durch eine selbsttätig fe-

dernde Staubschutzklappe verschlossen.

Beim Analysator IC/P kann durch Wenden, so

dass die Gravur l nach oben zeigt, die λ-Platte

aktiviert werden.

Beim Zuschalten wird entsprechend Abb. 68 der

Gangunterschied erhöht oder reduziert. Aus den

entsprechenden Farbumschlägen kann dann die

Schwingungsrichtung γ (d. h. entsprechend

dem Brechungsindex nγ mit dem größeren Bre-

chungsindex bestimmt werden. Der Quarzkeil

(69.7) erlaubt variable Farbverschiebungen am

Polarisationsmikroskop).

Abb. 68 Interferenzfarben in Abhängigkeit vom Gangunter-

schied bzw. von der Dicke und Farbumschläge bei Additions-

und Subtraktionslage einer λ- und λ/4-Platte

schwarz

lavendelgrau

graublau

gelblichweiß

lebhaftgelb

rotorange

tiefrot

indigo

himmelblau

grünlichblau

hellgrün

reingelb

orangerot

dunkelviolettrot

indigo

grünlichblau

meergrün

grünlichgelb

fleischfarben

kaminrot

mattpurpur

– λ

+ λ

200

400

600

800

1000

1200

1400

1600

Gangunterschied

1. Ordnung

2. Ordnung

3. Ordnung

λ

– –

λ

+ –

Zirkularpolarisation

Doppelbrechende Objekte zeigen bei einer Dre-

hung des Objekttisches 4 Auslöschungen.

Insbesondere bei Übersichtsbeobachtungen be-

finden sich von einer größeren Anzahl doppel-

brechender Objekte immer einige zufällig in der

Auslöschungslage. Für die gleichzeitige

Interferenzfarben-Beobachtung aller Objekte

wird Zirkularpolarisation angewendet:

• Entfernen Sie das Präparat aus dem Strahlen-

gang oder suchen Sie eine Objektleerstelle

auf.

• Kreuzen Sie die Polarisatoren exakt , die Pola-

risatoren müssen außerdem exakt in N – S/E –

W-Richtung orientiert sein, d. h. der Analysa-

tor muss entweder exakt in der 90°- oder 0°-

Polarisation eingestellt sein.

∩

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• Stecken Sie die λ/4-Platte (69.5) in den Tubus-

schlitz ein.

• Stecken Sie die λ/4-Platte (69.1) in die Auf-

nahme oberhalb des Polarisators ein und dre-

hen Sie, bis das objektfreie Sehfeld in maxi-

maler Dunkelstellung erscheint (Polarisatoren

zuvor exakt kreuzen!).

Kompensatoren für quantitative Messungen

Verstellbare Kompensatoren dienen zur exakten

Messung von Gangunterschieden.

Bei bekannter Objektdicke d und dem gemesse-

nen Gangunterschied Gamma (Γ) kann die Dop-

pelbrechung ∆n’ gemäß folgender Formel be-

rechnet werden:

Γ = d x ∆n’ [nm] bzw. ∆n = ––

Bei der Messung wird der Kompensator in den

Kompensatorschlitz eingeführt und so lange ver-

stellt, bis sich die zu messende Objektstelle in

maximaler Dunkelstellung befindet. Das Objekt

muss hierzu in eine bestimmte Diagonallage ge-

bracht werden.

Bei Tubusoptik HC P Messstellen evtl. mittels

Irisblende ausblenden.

Einzelheiten sind den Kompensatoranleitungen

zu entnehmen.

Folgende Kompensatoren stehen zur Verfügung:

Elliptischer Kompensator nach Brace-Köhler

69.9)

Dreh-Kompensator mit Kompensatorplättchen,

Gangunterschied von ca. λ/10. Die Messung er-

folgt in weißem oder monochromatischem Licht,

Messbereich bis ca. 50 nm.

Elliptischer Kompensator nach Sénarmont (69.6)

( λ/4-Plättchen in Subparallelstellung)

Die Messung erfolgt in monochromatischem

Licht (546 nm), wobei der um 360° drehbare Ana-

lysator erforderlich ist. Im Normalfall dient die-

ser Kompensator zur Messung von Gangunter-

schieden bis maximal 1 Ordnung. Es können

jedoch auch höhere Gangunterschiede gemes-

sen werden. Die Kompensation ergibt dann

Abb. 69 Kompensatoren

1, 2 λ/4 u. λ-Platte. Nur für Polarisationsmikroskope: 3 λ/4 u. λ-Platte für Revolverscheibe 8fach, 4, 5 λ/4 u. λ-Platte

fürTubusschlitz, 6 Drehbare λ/4-Platte (Sénarmont-Kompensator), 7 Quarzkeil, 8 Kippkompensator, 9 Kompensator nach

Brace-Köhler

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

allerdings nicht den gesamten Gangunter-

schied, sondern nur den Betrag, der über eine

ganze Wellenlänge oder über ein Vielfaches

davon hinausgeht. Ganze Wellenlängen müssen

mit einem Kippkompensator, Quarzkeil oder Ab-

schätzen der Interferenzfarbe bestimmt werden.

Die Genauigkeit ist größer als mit dem Kipp-

kompensator allein.

Kippkompensator B nach Berek mit Mess-

bereich bis 5 Ordnungen

Kompensator (69.8) mit MgF2-Plättchen für Mes-

sungen im monochromatischen oder weißen

Licht bis ca. 5 Ordnungen Gangunterschied. Der

Gangunterschied kann unmittelbar aus der

Summe beider Kompensationswinkel, die sich

durch beidseitiges Kippen des Kompensator-

plättchens ergeben, in einer beigefügten Eich-

tabelle abgelesen werden.

Kippkompensator K mit Messbereich bis 30 Ord-

nungen (69.7)

Zur Messung von Gangunterschieden in wei-

ßem oder monochromatischem Licht bis zum

angegebenen maximalen Gangunterschied. Das

Kompensatorplättchen besteht aus Kalkspat; die

Auswertung erfolgt durch einfache Rechnung

mittels beigefügter Tabellen und der angegebe-

nen Eichkonstante. Messung im weißen oder

monochromatischen Licht.

Konoskopie von Kristallstrukturen

Doppelbrechende Kristalle zeigen in der Aus-

trittspupille des Objektivs (d. h. innerhalb des

Objektivs) Interferenzbilder (Abb. 71a,b), die

auch Achsenbilder oder Konoskopbilder ge-

nannt werden. Die Form dieser Interferenzbilder

und ihre Veränderung beim Anwenden von Kom-

pensatoren ermöglichen Aussagen über die

Zahl der Kristallachsen (einachsige oder zwei-

achsige Kristalle), über die Orientierung dieser

Achsen und über das Vorzeichen der Doppel-

brechung (positiv oder negativ doppel-

brechender Kristall).

Da diese Interferenzbilder in der Pupille auftre-

ten, sind sie bei der üblichen Beobachtung

(Orthoskopie) nicht sichtbar. Sie können impro-

visiert beobachtet werden, indem ein Okular aus

dem Tubus entfernt wird und indem man mono-

kular aus einigen cm Entfernung in den Tubus

blickt. Eine verbesserte Beobachtung ist mit

dem Einstellfernrohr für Phasenkontrast mög-

lich.

Andere im Gesichtsfeld befindliche Kristalle

stören jedoch die Interferenzbilder eines in

der Sehfeldmitte befindlichen Kristalls, so dass

eine Ausblendung erfolgen muss.

Einstellen Konoskopie

Für die Konoskopie sind am geeignetsten die

Objektstellen, die möglichst niedrige Gangunter-

schiede aufweisen (Tabelle Abb. 68).

Voraussetzung für einwandfreie konoskopische

Beobachtung ist die exakte Zentrierung der Ob-

jektive und eine genaue Kreuzstellung der Pola-

risatoren.

• Schwenken Sie ein Objektiv möglichst hoher

Apertur in den Strahlengang, z. B. 40x, 50x

oder 63x.

• Schwenken Sie den Kondensorkopf in den

Strahlengang ein.

• Öffnen Sie die Aperturblende.

• Verschieben Sie den zu untersuchenden

Kristall möglichst genau in die Mitte des Seh-

feldes.

• Schwenken Sie die Tubuslinse 1.6x ein.

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• Je nach Größe des Kristalls Irisblende einen-

gen, Leuchtfeldblende evtl. zusätzlich einen-

gen.

• Schieben Sie die Bertrandlinse ein (Abb. 70B)

und fokussieren Sie diese durch Drehen des

Bedienknopfes, bis das Interferenzbild oder

der kreisförmige Hell-Dunkel-Rand der Pupille

fokussiert ist.

Bei Bedarf Bertrandlinse zentrieren:

Sechskantschraubendreher nacheinander in

die beiden Zentrieröffnungen einführen.

Rechtes Okular evtl. so ausrichten, dass das

Strichkreuz angenähert den Verschiebe-

richtungen beim Zentriervorgang entspricht.

• Stellen Sie den Kollektor optimal ein, evtl.

Streuscheibe verwenden.

Bestimmung des optischen Charakters

Einachsige Kristalle (Abb. 71a)

Einachsige Kristalle zeigen bei der Beobachtung

im konoskopischen (divergenten) Strahlengang

ein dunkles Kreuz, dessen Mittelpunkt die Lage

der optischen Achse angibt. Das Kreuz wird von

farbigen Interferenzstreifen* umgeben. Beim

Betätigen eines variablen Kompensators

(Quarzkeil oder Kippkompensator) wandern die

Ringe in zwei gegenüberliegenden Quadraten

des Kreuzes zum Mittelpunkt bzw. nach außen.

Der optische Charakter ergibt sich aus der

Bewegungsrichtung der Ringe gemäß Abb. 71.

Für die Bestimmung des optischen Charakters

sind Schnittlagen geeignet, bei welchen die

kristalloptische Achse geneigt zur Beobach-

tungsrichtung verläuft. Eine Bestimmung des

optischen Charakters kann meist auch dann

noch erfolgen, wenn der Mittelpunkt des Kreu-

zes außerhalb des Gesichtsfeldes liegt. Abb. 71

zeigt, dass für die Bestimmung des optischen

Charakters anstelle variabler Kompensatoren

auch Festkompensatoren benutzt werden kön-

nen.

Meist kann der optische Charakter auch dann

erkannt werden, wenn nur eine der optischen

Achsen in Blickrichtung des Beobachters liegt.

Im orthoskopischen Strahlengang verändert

sich die Helligkeit derartig orientierter Präpara-

beim Drehen wenig oder nicht. Im kono-

skopischen Strahlengang wird dann nur eine

der beiden Isogyren sichtbar.

Zweiachsige Kristalle (Abb. 71b)

Für die Bestimmung des optischen Charakters

sind besonders die Schnittlagen geeignet, bei

welchen die Winkelhalbierende der beiden opti-

schen Achsen parallel zur Blickrichtung verläuft

(Schnitt senkrecht zur spitzen Bisektrix).

Im divergenten Strahlengang erkennt man ein

dunkles Kreuz, das sich beim Drehen des Ob-

jekttisches in zwei Hyperbeläste, den sogenann-

ten Isogyren, öffnet. Das Kreuz bzw. die

Hyperbeläste werden von farbigen Interferenz-

streifen umgeben. Aus der Verschiebungs-

richtung dieser Streifen nach Betätigen des

Kompensators kann gemäß Abb. 71 oder nach-

folgender Regel der optische Charakter be-

stimmt werden. Die Symmetrieebene der

Abb. 70 Funktionen der Pol-Tubusoptik HC P

Bedienelemente Orthoskopie 1x Orthoskopie 1.6x Konoskopie

Tubuslinse 1x 1.6x 1.6x

Irisblende beliebig, da nicht Sehfeld angepasst > Objekt

Bertrandlinse im Strahlengang aus ein

Polarisation ein oder aus ein oder aus gekreuzt

(nicht für

Dichroismus/

Pleochroismus)

O/B

1.6x

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

Abb. 71a Bestimmung des optischen Charakters einachsiger Strukturen

Links: Positiv einachsiger Kristall, senkrecht zur optischen Achse geschnitten.

Rechts: Negativ einachsiger Kristall, senkrecht zur optischen Achse geschnitten.

1 Darstellung der Schwingungsrichtungen im Objekt und im Kompensator,

2 Veränderung der Interferenzfigur bei Verwendung einer λ/4-Platte,

3 Veränderung der Interferenzfigur bei Verwendung einerλ-Platte

Abb. 71b Tabelle zur Bestimmung des optischen Charakters

Isogyren (= Achsenebene) muss dabei senk-

recht zur γ-Richtung des Kompensators verlau-

fen:

Zweiachsig positive Kristalle:

Die Bewegungsrichtung der Interferenzstreifen

verläuft beim Betätigen des Kompensators von

der konvexen zur konkaven Seite der Isogyren.

Zweiachsig negative Kristalle:

Die Bewegungsrichtung der Interferenzstreifen

verläuft von der konkaven zur konvexen Seite.

Fehlermöglichkeiten

Polarisatoren durch starke Lichtquellen geschä-

digt (verfärbt) oder stark verschmutzt.

Objektive oder Kondensor durch mechanische

Beschädigung verspannt.

Strahlenteiler oder Filter zwischen den Polarisa-

toren.

Einbettmittel bei Durchlichtpräparaten doppel-

brechend.

γλ

–

* Beim 1/4-λ-Glimmerplättchen treten an Stelle der schwarzen Bogen schwarze Punkte auf.

Einachsig Zweiachsig

Orientierung

des

Kondensor-

plättchens

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.1.4.3 Motorisches Verfahren

• Nach dem Anwählen des Kontrastverfahrens

POL wird im Kondensor automatisch die Posi-

tion des Polarisators angefahren, wenn das

Mikroskop mit den Komponenten ausgestattet

ist. Auch der Analysator-Würfel wird automa-

tisch in den Strahlengang gebracht.

9.1.4.4 Kombinierte Verfahren

• Bei den Mikroskopen Leica DM4000 B,

DM4500 P und Leica DM5000 B besteht die

Möglichkeit, rein mechanische und motori-

sche Komponenten zu kombinieren.

Gilt nur für DM4500 P:

Nach dem Einschwenken der Bertrandlinse

(links) wird CONOS im Display angezeigt. Licht-

intensität, Apertur- und Feldblende werden dem

aktuellen Objektiv (Objektivvergrößerung für

Konoskopie 40x, 63x oder 100x) zugeordnet.

9.1.5 Differentieller Interferenzkontrast (TL)

9.1.5.1 DM4500 P

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Legen Sie ein Präparat auf und schwenken

Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren DIC.

Drücken Sie dazu die variable Taste DIC.

Alternativ drücken sie die variable Taste

CHANGE TL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint ICT.

• Schwenken Sie den Polarisator an der Unter-

seite des Kondensors in den Strahlengang

ein. Stellen Sie sicher, dass der rote Index-

punkt an der Frontseite des Polarisators auf 0

steht (Abb. 72).

Abb. 72 Polarisator einschwenken

1Polarisator

Abb. 73 Analysator einschieben

1Analysator

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

• Schieben Sie den Analysator auf der linken

Seite des Stativs bis zur Rastung ein (Abb. 73).

• Setzen Sie dann den Objektiv-Prismen-

schieber in den Schlitz am Objektivrevolver.

• Das zu verwendende DIC-Prisma wird im Dis-

play angezeigt.

• Zur Feinjustierung drehen Sie an der Rändel-

schraube (74.1) am Objektiv-Prismenschieber.

9.1.5.2 DM5000 B

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Legen Sie ein Präparat auf und schwenken

Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren DIC.

Drücken Sie dazu die variable Taste DIC.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE TL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint ICT.

• Der Polarisator, der sich im Kondensor befin-

det, und das passende Kondensor-Prisma

werden automatisch in den Strahlengang

gebracht. Das korrespondierende Objektiv-

Prisma sowie der Analysator-Würfel werden

ebenfalls automatisch angefahren.

• Die Feinjustierung erfolgt über das Rändelrad

oberhalb des Objektivrevolvers.

Alternativ:

• Schwenken Sie den Polarisator an der

Kondensorunterseite manuell in den Strahlen-

gang ein (Abb. 72).

• Schieben Sie den Analysator ebenfalls manu-

ell auf der linken Seite des Stativs bis zur

Rastung ein (Abb. 73).

Objektiv- und Kondensor-Prismen werden au-

tomatisch in den Strahlengang eingebracht.

• Die Feinjustierung erfolgt über das Rändelrad

oberhalb des Objektivrevolvers.

Abb. 74 Motorische Variante

1Rändelrad zur Feinjustierung

9. Kontrastverfahren für Leica DM4000 B/DM4500 P/DM5000 B

9.2 Fluoreszenz

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Fluoachse/Fluowürfel (FLUO) um.

• Legen Sie ein Präparat auf und schwenken

Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Auf dem Display erscheint der aktuelle Fluo-

reszenz-Filterwürfel.

• Durch Schließen des Auflicht-Shutters kön-

nen Sie Ihr Präparat vor dem Ausbleichen

schützen.

Drücken Sie dazu die variable Taste

SHUTTER.

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint das Symbol:

• Wechsel des Fluoreszenz-Filterwürfel:

Durch Drücken der variablen Taste

Cube oder Cube

↓

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

• Die Fluoreszenz-Intensität kann durch Einset-

zen der Booster-Linse auf der rechten Seite

des Stativs gesteigert werden (Abb. 75). Es

wird empfohlen, die Booster-Linse in den vor-

deren Schlitz einzuschieben.

• Bei Mehrfach-Fluoreszenz wird die Verwen-

dung des Excitation-Managers empfohlen.

Der Excitation-Manager wird in das Stativ

auf der rechten Seite bis zur letzten Rastung

eingeschoben (Abb. 76). Es wird empfohlen,

den Excitation-Manager in den vorderen

Schlitz einzuschieben.

Abb. 76 Einsetzen des Excitation-Managers

Abb. 75 Einsetzen der Booster-Linse

10. Kontrastverfahren für Leica DM4000 M

10.1 Auflicht

10.1.1 Hellfeld (IL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Auflichtachse (IL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren BF

(Brightfield).

Drücken Sie dazu die variable Taste BF.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE RL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint BF.

• Legen Sie ein Präparat auf.

• Schwenken Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

Die Helligkeitswerte werden für jedes Objek-

tiv gespeichert.

10. Kontrastverfahren für

Leica DM4000 M

10.1.2 Dunkelfeld (IL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Auflichtachse (IL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren DF

(Darkfield).

Drücken Sie dazu die variable Taste DF.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE RL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint DF.

Der DF-Reflektor wird in den Strahlengang

eingeschwenkt.

• Legen Sie ein Präparat auf.

• Schwenken Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

Hinweise:

Die maximal anwendbare Objektivapertur für

Dunkelfeld ist 0.75. Alle Objektive mit höherer

Apertur werden automatisch für dieses Verfah-

ren gesperrt (DF in der Anzeige blinkt).

Die Aperturblende wird bei der Wahl des

Dunkelfeldverfahrens ganz geöffnet und kann

nicht verstellt werden.

10. Kontrastverfahren für Leica DM4000 M

10.1.3 Polarisation (IL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Auflichtachse (IL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren POL (Pola-

risation).

Drücken Sie dazu die variable Taste POL.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE RL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint POL.

Automatisches Verfahren

• Der Filterwürfel ICR wird automatisch in den

Strahlengang gebracht.

Manuelles Verfahren:

• Schieben Sie den entsprechenden Polarisator

(77.3) und den IC/P Analysator (78.1) manuell

am Stativ in den Strahlengang ein. Bringen

Sie dann Polarisator und Analysator bis zur

maximalen Dunkelheit in Kreuzstellung.

• Legen Sie ein Präparat auf und schwenken

Sie ein Objektiv niedriger Vergrößerung ein.

Abb. 78

1Analysator einschieben

Abb. 77 Objektiv-Prismenschieber

1Rändelrad zur Feinjustierung

2Prismen-Schlitz mit eingestecktem Prismen-Schieber

3Polarisator einschieben

10. Kontrastverfahren für Leica DM4000 M

10.1.4 Interferenzkontrast (RL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Auflichtachse (IL) um.

• Legen Sie ein Präparat auf und schwenken

Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren DIC.

Drücken Sie dazu die variable Taste DIC.

Alternativ: Drücken Sie die variable Taste

CHANGE RL .

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint ICR.

• Der Filterwürfel ICR (enthält Polarisator und

Analysator) wird automatisch in der Auflicht-

achse in den Strahlengang gebracht. Setzen

Sie den Objektiv-Prismenschieber in den Pris-

men-Schlitz ein (77.2).

Alternativ:

• Schieben Sie den ICR-Polarisator (77.3) und

den IC/P Analysator (78.1) manuell am Stativ

in den Strahlengang ein.

• Setzen Sie dann den Objektiv-Prismen-

schieber in den Schlitz am Objektivrevolver

ein (77.2).

• Zur Feinjustierung drehen Sie an der Rändel-

schraube (77.1) am Objektiv-Prismenschieber.

10.2 Durchlicht

10.2.1 Hellfeld (TL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren BF

(Brightfield).

Drücken Sie dazu die variable Taste BF TL.

(Tastenbelegung siehe „Identification Sheet“)

Auf dem Display erscheint BF TL.

• Legen Sie ein Durchlichtpräparat auf.

• Schwenken Sie ein geeignetes Objektiv ein.

• Fokussieren Sie das Bild mit dem Fokushand-

rad und stellen Sie die Helligkeit mit den

Funktionstasten INT ein.

10.2.2 Polarisation (TL)

• Schalten Sie mit der Funktionstaste TL/IL auf

die Durchlichtachse (TL) um.

• Wählen Sie das Kontrastverfahren POL (Pola-

risation).

• Schieben Sie den Analysator auf der linken

Stativseite in den Strahlengang ein (Abb. 78).

• Schwenken Sie den Polarisator an der Unter-

seite des Kondensors in den Strahlengang

ein. Stellen Sie sicher, dass der rote Index-

punkt an der Frontseite des Polarisators auf 0

steht (Abb. 72).

11. Trouble Shooting

Problem

Stativ

Das Mikroskop reagiert nicht.

Beleuchtung

Das Bild ist absolut dunkel.

Das Bild ist inhomogen/ungleichmäßig ausge-

leuchtet.

Die Beleuchtung „flackert“.

Die Lampe zündet nicht sofort nach dem Ein-

schalten.

Ursache/Abhilfe

Stellen Sie sicher, dass Spannung auf der

Steckdose liegt.

Stellen Sie sicher, dass das Mikroskop an das

Netz angeschlossen ist.

Überprüfen Sie die Kabelverbindungen.

Informieren Sie den Service und lassen Sie

überprüfen, ob die Sicherung defekt ist.

Öffnen Sie den Shutter (→

S. 39).

Überprüfen Sie den Anschluss der Lampen-

häuser am Mikroskop.

Durchlicht-Anschluss:

Auflicht- (Fluo-) Anschluss:

Stellen Sie sicher, dass die Lampen an das

Netz angeschlossen sind.

Informieren Sie den Service und lassen Sie

überprüfen, ob die Sicherung am Vorschalt-

gerät ebq 100 defekt ist.

Entfernen Sie alle nicht benötigten Filter aus

dem Strahlengang.

Zentrieren Sie die Lampe (→

S. 47ff).

Wechseln Sie die alte Lampe aus (→

S. 23ff).

Stellen Sie sicher, dass kein Wackelkontakt

zum Netzteil vorliegt.

Wechseln Sie die alte Lampe aus (→

S. 23ff).

Schalten Sie das ebq 100 mehrmals an und

aus.

Lassen Sie Hg-Lampen vor dem erneuten An-

schalten erst abkühlen.

11. Trouble Shooting

Problem

Hellfeld

Das Präparat ist nicht zu fokussieren.

Dunkelfeld

Es lässt sich kein eindeutiger DF-Kontrast ein-

stellen.

Das Bild ist inhomogen/ungleichmäßig ausge-

leuchtet.

Unerwünschte Lichtstreuung.

Phasenkontrast

Es lässt sich kein Phasenkontrast einstellen.

Ursache/Abhilfe

Verwenden Sie das korrekte Immersions-

medium.

Legen Sie das Präparat mit dem Deckglas

nach oben.

Stellen Sie sicher, dass die Deckglasdicke

korrekt ist und mit den Angaben am Objektiv

übereinstimmt.

Stellen Sie sicher, dass ein DF-Objektiv ver-

wendet wird.

Die Objektiv-Apertur ist zu hoch (maximal

0,75). Objektiv-Apertur eventuell durch Iris-

blende am Objektiv reduzieren.

Überprüfen Sie die Kondensorzentrierung.

Die Objektivvergrößerung ist zu schwach.

Wählen Sie eine höhere Vergrößerung.

Säubern Sie das Präparat und die angrenzen-

den Linsenflächen (→

S. 77).

Das Präparat ist zu dick.

Das Deckglas ist nicht gleichmäßig aufgelegt.

Überprüfen Sie die Zentrierung der Lichtringe

(→ S. 44).

11. Trouble Shooting

Problem

Polarisation

Es lässt sich kein Polarisationskontrast ein-

stellen.

Das Bild ist unzureichend.

Das Bild ist zu dunkel.

Es lässt sich kein Konoskopiebild einstellen.

Fluoreszenz

Das Bild ist absolut dunkel (keine Fluoreszenz).

Die Fluoreszenz ist zu schwach.

Display

Die Anzeige blinkt.

FAIL! erscheint auf dem Display.

Ursache/Abhilfe

Kreuzen Sie Polarisator und Analysator bis zur

maximalen Dunkelheit (ohne Präparat)

(→ S. 61ff, 72).

Einbettmittel bei Durchlichtpräparaten ist

doppelbrechend.

Polarisatoren können durch starke Lichtquel-

len geschädigt werden. Überprüfen Sie, ob

der Polarisator geschädigt (verfärbt) oder

stark verschmutzt ist.

Überprüfen Sie, ob ein Strahlenteiler oder Fil-

ter eingeschaltet ist.

Objektive oder Kondensoren können durch

mechanische Beschädigungen verspannt

sein.

Öffnen Sie den Shutter (→

S. 70).

Wählen Sie die Auflichtachse (IL) an (→

S.40).

Überprüfen Sie die Antigen-Antikörper-Kom-

bination.

Setzen Sie den Booster ein (→

S. 33).

Zentrieren Sie die Lampe (→

S. 47ff).

Setzen Sie eine neue Lampe ein (→

S. 23f).

Schwenken Sie ein zum Kontrastverfahren

passendes Objektiv ein.

Überprüfen Sie die eingedrehten Objektive,

Filterwürfel, etc.

Schalten Sie das Mikroskop aus und wieder ein.

12. Pflege des Mikroskops

Achtung!

Vor Reinigungs- und Wartungsarbeiten Netz-

stecker ziehen!

Elektrische Komponenten vor Feuchtigkeit

schützen!

Mikroskope in warmen und feucht-warmen Kli-

maten brauchen besondere Pflege, um einer

Fungusbildung vorzubeugen.

Das Mikroskop sollte nach jedem Gebrauch ge-

reinigt werden und die Mikroskop-Optik peinlich

sauber gehalten werden.

12.1 Staubschutz

Hinweis:

Zum Schutz gegen Verstaubung sollten Sie das

Mikroskop und die Zubehörkomponenten nach

jedem Gebrauch mit der Schutzhülle abdecken.

Achtung!

Mikroskop und Lampenhäuser zunächst ab-

kühlen lassen. Die Schutzhülle ist nicht

temperaturbeständig. Außerdem kann sich

Kondenswasser bilden.

12.2 Reinigung

Achtung:

Faser- und Staubreste können bei der

Fluoreszenzmikroskopie störende Untergrund-

fluoreszenz erzeugen.

Reinigen lackierter Teile

Staub und lose Schmutzpartikel können mit

einem weichen Pinsel oder fusselfreien

Baumwolltuch entfernt werden.

Festsitzender Schmutz kann je nach Bedarf mit

allen handelsüblichen wässrigen Lösungen,

Waschbenzin oder Alkohol beseitigt werden.

Verwenden Sie für die Reinigung der lackierten

Teile einen Leinen- oder Lederlappen, der mit

einer dieser Substanzen befeuchtet ist.

Achtung:

Aceton, Xylol oder nitrohaltige Verdünnun-

gen können das Mikroskop beschädigen und

dürfen deshalb nicht verwendet werden.

Pflegemittel unbekannter Zusammensetzung

sind an einer wenig sichtbaren Stelle zu prüfen.

Lack- oder Kunststoffoberflächen dürfen nicht

mattiert oder angelöst werden.

Reinigen des Objekttisches

Entfernen Sie helle Flecken auf dem Objekttisch

durch Einreiben mit Paraffinöl oder säurefreier

Vaseline.

12. Pflege des Mikroskops

Reinigen von Glasflächen

Entfernen Sie Staub auf Glasflächen mit einem

feinen, trockenen und fettfreien Haarpinsel,

durch Abblasen mit einem Blaseball oder durch

Absaugen mittels Vakuum.

Entfernen Sie hartnäckigen Schmutz auf Glas-

flächen vorsichtig mit einem sauberen, mit de-

stilliertem Wasser angefeuchteten Tuch. Lässt

sich der Schmutz nicht entfernen, können an-

stelle von Wasser auch reiner Alkohol, Chloro-

form oder Waschbenzin verwendet werden.

Reinigen von Objektiven

Achtung!

Die Objektive dürfen beim Reinigen nicht

auseinandergeschraubt werden. Zeigen

sich Schäden auf innenliegenden Flächen,

so sind die Objektive zur Instandsetzung an

Ihre Leica-Niederlassung zu schicken. Auch

von einer Reinigung der Innenflächen der

Okulare wird abgeraten.

Bei Objektiven wird die Frontlinse wie bei „Rei-

nigen von Glasflächen“ beschrieben gesäubert.

Die obere Linse wird durch Abblasen mit einem

Blasebalg gereinigt.

Entfernen von Immersionsöl

Achtung!

Sicherheitshinweise zum Immersionsöl be-

achten!

Wischen Sie zunächst das Immersionsöl mit ei-

nem sauberen Baumwollappen ab, und wischen

Sie anschließend mit Ethylalkohol mehrmals

nach.

12.3 Umgang mit Säuren und Basen

Bei Untersuchungen unter Verwendung von

Säuren oder anderen aggressiven Chemikalien

ist besondere Vorsicht geboten.

Achtung:

Vermeiden Sie unter allen Umständen die di-

rekte Berührung von Optik und mechani-

schen Teilen mit diesen Chemikalien.

13. Wichtigste Verschleiß- und Ersatzteile

Bestell-Nummer

Sach-Nummer Bezeichnung Verwendung für

Ersatzlampen

11 500 974 Halogenglühlampe 12 V 100 W Lampenhaus 107/2

11 500 137 Hg-Höchstdrucklampe 50 W Lampenhaus 106 z

11 500 138 Hg-Höchstdrucklampe 100 W Lampenhaus 106 z

11 500 321 Hg-Höchstdrucklampe 100 W Lampenhaus 106 z

(103 W/2)

11 500 139 Xenon-Hochdrucklampe 75 W Lampenhaus 106 z

Schraubdeckel für unbesetzte Objektivaufnahmen

020-422.570-000 Schraubdeckel M 25 Objektivrevolver

Ersatzaugenmuschel (Blendschutz) für Okular HC PLAN

021-500.017-005 Augenmuschel HC PLAN Okular 10x/25

021-264.520-018 Augenmuschel HC PLAN Okular 10x/22

021-264.520-018 Augenmuschel HC PLAN Okular 10x/20

Immersionsöl

11 513 860 120 ml Objektive OIL und IMM

11 513 861 250 ml und Öl-Kondensorköpfe

11 513 859 10 ml, ohne Eigenfluoreszenz

13.Wichtigste Verschleiß- und Ersatzteile

14. Abkürzungen und Piktogramme

Kontastverfahren

Vergrößerung

Lichtintensität/Blenden

Lichtaufteilung im motorischen Tubus

Durchlicht-Shutter auf

Durchlichtshutter zu

Auflicht-Shutter auf

Auflicht-Shutter zu

14. Abkürzungen und Piktogramme

↓

↑

AET Advanced Ergo Tube

AP Aperturblende

BF Hellfeld

COMBI Kombinationsverfahren

CONOS Konoskopie

CUBE Fluo-Würfel

DF Dunkelfeld Auflicht/Durchlicht

DIC Differentieller Interferenzkontrast

FD Leuchtfeldblende

FLUO Fluoreszenzachse (Auflicht)

ICR Interferenzkontrast (Auflicht)

ICT Interferenzkontrast (Durchlicht)

IL Auflicht

INT Helligkeit

MBDT Motorized Basic Documentation Tube

PH Phasenkontrast

POL Polarisation Auflicht/Durchlicht

RL Auflicht

TL Durchlicht



15. Index

Analysator 32, 61, 69, 72

Analysator-Würfel 68, 69

Anschluss des Kondensors 21

Anschluss Stromversorgung 34

Aperturblende 15, 39, 59

Arretierungsstift 30

Auflicht-Revolverscheibe 30

Auflicht-Shutter 39

Auflichtachse 12

Auflichtpolarisatoren 31

Bedientasten 15

Beleuchtungsmanager 12

Bertrandlinse 58, 68

Booster-Linse 70

Definierte Funktionstasten 40

DIC-Prismen 32

Differentieller Interferenzkontrast 68

Display 15, 39

Drehbarer Polarisator 31

Drehtisch 20, 52

Dunkelfeld 61, 71

Dunkelfeldstopp 61

Durchlicht- und Auflichtanalysator 32

Durchlicht-Polarisator ICT/P 31

Durchlicht-Shutter 39

Durchlichtachse 12

Durchlichtfilter 16

Einstellfernrohr 44

Elektrische Sicherheit 10

Elektronikbox Leica CTR5000 10, 34

Entsorgung 11

Ergomodul 33

Excitation-Manager 33, 70

Fehlsichtigkeit 55

Filterblockwechsler 16

Filterwürfel 30

Filterwürfel ICR 72, 73

FIM (Fluo-Intensitätsmanager) 12, 59

Fluoreszenz 70

Fluoreszenz-Intensität 70

Focus finder 37

Fokussierung 41, 53

Funktionstasten 35, 40

Gasentladungslampen 27, 28

Halogenglühlampe 26, 47

Hellfeld 60, 71

Hg 50-Brenner 28

Identification Sheet 23, 30, 60ff

Immersionsöl 55, 78

Initialisierung 38

Interferenzkontrast 73

Justieren der Lichtquellen 45

Koaxialtrieb 51

Köhlersche Beleuchtung 21, 41

Kompensatoren 64

Kondensor 13, 15, 21

Kondensorhalter 21

Kondensorhöhenverstellung 19, 21

Kondensorzentrierung 41

Konoskopie 65

Konoskopie-Modul 13, 38

Kontrastverfahren 12, 60, 71

λ/4- und λ-Platte 63

Lampenhaus 16

Lampenhaus 106 z 25, 46

Lampenhaus 107/2 23, 45

Lampenhausaufnahme 24, 26, 29

Leica SmartTouch 13

Leuchtfeldblende 15, 39, 59

Lichtintensität 39

Lichtquellen 45, 59

Lichtquellen für Auflichtachse 25

Lichtquellen für Durchlichtachse 23

Motorischer Analysator 32

Motorischer Polarisator 31

Objektführer Pol 52

Objektiv-Prismenschieber 73

Objektivapertur 61

Objektive 55

Objektivrevolver 12, 15

Objektivzentrierung 56

Objekttisch 19

Okular 15

Optischer Charakter 66

Phasenkontrast 44, 60

Phasenkontrastringe überprüfen 44

Polarisation 61, 72

Polarisator 61, 62, 69, 72

Polarisator L/ICR 31

Polarisator R/ICR 31

Polarisator R/P 31

Präparatehalter 19

Prismen-Schlitz 73

Quarzkeil 63

Quarzplatte 58

Quecksilberlampe Hg 50 W 48

Quecksilberlampe Hg100W/Xe75W 49

Reflektorwürfel zur Lampenjustierung 45

Reflektorwürfel 30

Reinigen von Objektiven 78

Reinigung 77

Reset-Funktion 35

Shutter 70

Softwarepaket LAS 13, 17

Spiegelhaus 33

Strahlenteilung bei Fototuben 54

Tubusoptik HC P 58, 66

Umgebungsbedingungen 18

Umgebungstemperatur 10

Umschaltung Durchlicht/Auflicht 15

Variable Funktionstasten 15, 16, 35, 40

Vergrößerungswechsler 13, 58

Vorschaltgerät ebq 100 10, 29, 51

Xe 75-Brenner 28

Zirkularpolarisation 63

Zulässige Umgebungsbedingungen 18

Zwischensysteme 19

16. EU-Konformitätserklärung

Download:

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_dm4000b

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_dm4000m

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_dm4500p

http://www.light-microscopy.com/down_ce-declaration_dm5000b

MICROSYSTEMS

www.leica-microsystems.com

Copyright © Leica Microsystems CMS GmbH · Ernst-Leitz-Straße · 35578 Wetzlar · Germany 2006 · Tel. (0 64 41) 29-0 · Fax (064 41) 29-25 99 LEICA and the Leica logos are registered trademarks of Leica IR GmbH.

Order nos. of the editions in: English/German/French 933963 · Spanish 933 964 · Italien 933 965 · Part-No. 501-347 Printed on chlorine-free bleached paper. IX/07/M.H.

Leica Microscope And Magnifier Dm5000B Users Manual DM4000 5000 Cover E/d

DM4000M to the manual 8338026a-ab2a-494d-8ca9-9b65d7a84e61

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